O objetivo deste trabalho foi verificar a relação de populações dos patógenos Fusarium solani, Rhizoctonia solani, dos antagonistas Trichoderma spp. e de formas saprófitas de F. oxysporum, com alguns indicadores biológicos de qualidade do solo

BRANDÃO, R. S.

LOBO JUNIOR, M.

PRADO, T. dos S.

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 Documentos, IAC, Campinas, 85, 2008  977 RELAÇÃO DE INDICADORES BIOLÓGICOS DE QUALIDADE DE SOLOS COM Fusarium spp., Rhizoctonia solani e Trichoderma spp. EM UMA ÁREA SOB INTEGRAÇÃO LAVOURA-PECUÁRIA  Renata Silva BRANDÃO1 Murillo LOBO JUNIOR2 Thaís dos Santos PRADO1  INTRODUÇÃO  A supressão de patógenos habitantes do solo em sistemas de integração lavoura-pecuária (ILP) é creditada ao manejo de espécies de Brachiaria spp. que, junto ao aporte de matéria orgânica no solo e á formação de palhada, estimulam o desenvolvimento de fungos e bactérias endêmicos e que reduzem o inóculo de patógenos. (LOBO JÚNIOR et al., 2005). Dentre os patógenos que podem ser controlados com a ILP, destacam-se Sclerotinia sclerotiorum, Rhizoctonia solani e Fusarium solani, espécies que promovem grandes danos ao feijoeiro comum (Phaseolus vulgaris L.). Estes patógenos são componentes da comunidade microbiana do solo, e seu acúmulo é uma indicação de desequilíbrio ambiental (VAN BRUGGEN & SEMENOV, 2000). A sustentabilidade de agroecossistemas também tem sido avaliada por meio de indicadores biológicos, que refletem alterações na comunidade microbiana do solo. Variáveis como a atividade enzimática e a biomassa microbiana são indicadores sensíveis que podem ser utilizados no monitoramento de alterações ambientais decorrentes do uso agrícola. Por estes motivos, podem orientar o planejamento e a avaliação das práticas de manejo utilizadas (TURCO et al., 1994; DORAN & PARKIN, 1996). É possível que as variações na densidade de inóculo de patógenos e de espécies benéficas habitantes do solo, como Trichoderma spp. e formas saprófitas de Fusarium oxysporum possam ser associadas a mudanças registradas com indicadores de qualidade do solo. Apesar destes temas serem investigados com freqüência, há poucos relatos sobre a associação de microrganismos específicos com indicadores biológicos. Desta forma, o objetivo deste trabalho foi verificar a relação de populações dos patógenos Fusarium solani, Rhizoctonia solani, dos antagonistas Trichoderma spp. e de formas saprófitas de F. oxysporum, com alguns indicadores biológicos de qualidade do solo.  MATERAIS E MÉTODOS  Foram obtidas amostras de solo na Embrapa Arroz e Feijão (Santo Antônio de Goiás, GO), em uma área sob ILP. Amostras de solo da camada 0-10 cm foram obtidas na safra 2007-2008 em seis tratamentos envolvendo rotações de culturas. Para cada tratamento, foram obtidas três repetições, cada uma composta de várias sub-amostras. Os tratamentos incluíam os cultivos de arroz, soja, milho + Brachiaria brizantha, B. brizantha solteira por um, dois e três anos, além de pastagem degrada e de vegetação nativa. A análise do carbono (C) e do nitrogênio (N) da biomassa microbiana do solo foi feita segundo metodologias de fumigação-extração descritas por VANCE et al. (1987) e BROOKES et                                                  1Universidade Federal de Lavras - UFLA Campus Universitário, Caixa Postal 3037, CEP 37200-000, Lavras, MG, E-mail: brandaobio@hotmail.com 2Embrapa Arroz e Feijão, Rodovia GO 462, Km 12, Caixa Postal 179, 75375-000, Santo Antônio de Goiás, GO. E-mail:murillo@cnpaf.embrapa.br  Documentos, IAC, Campinas, 85, 2008  978 al. (1985), respectivamente. A atividade enzimática total (AET) foi estimada de acordo com GHINI et al. (1998). Uma análise exploratória dos dados das variáveis C e N da biomassa microbiana e AET foi realizada e observou-se a não normalidade das três primeiras, por meio do teste de Shapiro-Wilks. Assim, os valores estimados para CBM, e NBM foram transformados utilizando-se log (x). Após a transformação, realizou-se a análise de variância e as médias foram comparadas pelo teste de Tukey. As populações de microrganismos foram avaliadas utilizando-se a diluição seriada das amostras e plaqueamento em meios de cultura semi-seletivos. Para identificação e quantificação de Trichoderma spp., F. oxysporum, F. solani e Rhizoctonia solani foram utilizados os meios de Martim, de Komada, de Nash & Snyder e ágar-água, respectivamente. Após seis dias sob incubação à temperatura ambiente, foi feita a leitura das colônias de Trichoderma sp., F. oxysporum, F. solani enquanto que as leituras das colônias de e R. solani foram feitas depois de três dias. Também foi avaliada a germinação carpogênica de escleródios de S. sclerotiorum. Neste procedimento, 250 g de solo da camada 0-10 cm dos tratamentos foram colocadas em caixas de acrílico transparente (caixas gerbox) com 11 x 11 x 3,5 cm. Sobre o solo com saturação de água, foram colocados 25 escleródios por caixa, incubados a 20 ºC e fotoperíodo de 12 horas luz/escuro, durante 40 dias. Após este período, foi estimada a porcentagem de germinação de escleródios, com formação de apotécios. Os resultados obtidos de cada tratamento para a densidade dos diferentes fungos e germinação de escleródios foram pareados com os de C e N da biomassa microbiana e AET, para análise de regressão e de correlação com o coeficiente de Pearson.  RESULTADOS E DISCUSSÃO  Foram verificadas correlações em diferentes níveis entre indicadores biológicos de qualidade do solo, densidade dos microrganismos do e germinação carpogênica de escleródios de S. sclerotiorum. Destacaram-se as correlações de C da biomassa microbiana com F. oxysporum e R. solani; N da biomassa microbiana com F. oxysporum e germinação de escleródios; AET e F. oxysporum. Trichoderma spp. foi correlacionado somente ao N da biomassa microbiana (=-0,33).  Tabela 1 - Matriz de correlação entre indicadores biológicos de qualidade do solo, densidade de Fusarium solani, F. oxysporum, Rhizoctonia solani e germinação carpogênica de escleródios de Sclerotinia sclerotiorum em solos cultivados com sistema de integração lavoura-pecuária. C e N = carbono e nitrogênio da biomassa microbiana; AET = atividade enzimática total. Santo Antônio de Goiás, 2008.  C AET N Fusarium solani Fusarium oxysporum Rhizoctonia solani Trichod. spp. Sclerotinia sclerotiorum C  0,49 0,81 0,10 0,56 0,55 -0,02 -0,08 AET   0,76 -0,32 0,61 0,29 -0,08 -0,28 N    -0,23 0,84 0,21 -0,33 -0,46 F. solani     -0,26 0,15 0,26 0,32 F. oxysporum      0,19 -0,31 -0,57 R. solani       0,12 0,15 Trichod. spp.        0,42  Para as relações citadas acima, também foram obtidos modelos lineares de regressão entre microrganismos e indicadores de qualidade do solo. A Figura 1 apresenta dois exemplos que mostram a relação inversamente proporcional entre F. solani e AET, e porcentagem de  Documentos, IAC, Campinas, 85, 2008  979 germinação de escleródios de S. sclerotiorum com o N da biomassa microbiana. Em ambas as situações, a maior inibição dos patógenos foi obtida em solos sob vegetação nativa e com maior tempo de cultivo de braquiárias.   A parte viva da matéria orgânica é representada em média por 2% a 5% do carbono orgânico total e 1% a 5% do nitrogênio total controlando assim funções-chave no solo como, informações rápidas sobre as mudanças nas propriedades orgânicas do solo, que podem ser causadas por práticas agrícolas. É possível que os sistemas agrícolas, como os de integração lavoura-pecuária, possam ser monitorados ou mesmo aperfeiçoados por meio dos indicadores utilizados neste estudo, para incremento da supressão aos patógenos ou suas doenças. Como a rotação de culturas anuais com pastagens tem se expandido no país como uma das melhores alternativas para o manejo sustentável dos solos e dos recursos hídricos (KLUTHCOUSKI et al., 2003), também é desejável que os indicadores C e N da biomassa microbiana e AET sejam utilizados em novas áreas, para confirmar sua confiabilidade e consistência (VAN BRUGGEN & SEMENOV, 2000). Desta forma, se os indicadores forem validados em diferentes locais, poderão ser utilizados para monitorar a sustentabilidade da produção agrícola, em sistemas de Integração Lavoura-Pecuária (ILP). (KLUTHCOUSKI et al., 2003).  REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS  BROOKES, P.C.; LANDMAN, A.; PRUDEN, G.; JENKINSON, D.S. Chloroform fumigation and the release of soil nitrogen: a rapid direct extraction method to measure soil microbial biomass nitrogen in soil. Soil Biology and Biochemistry, Oxford, v.17, n.6, p.837-842, 1985. DORAN, J.W.; PARKIN, T.B. Defining and assessing soil quality. Defining soil quality for sustainable environment. Soil Science Society of America, Madison, p.3-21, 1994. GHINI, R.; MENDES, M.D.L.; BETTIOL, W. Método de hidrólise de diacetato de fluoresceína (FDA) como indicador de atividade microbiana no solo e supressividade a Rhizoctonia solani. Summa Phytopathologica, Jaboticabal, v.24, n.3/4, p.239-242, 1998. JANVIER, C., VILLENEUVE, F.; ALABOUVETTE, C.; EDEL-HERMANN, V.; MATEILLE, T.; STEINBERG, C. Soil health through soil disease suppression: Which strategy from descriptors to indicators? Soil Biology & Biochemistry, Oxford, v.39, p.1-23, 2007. KLUTHCOUSKI, J.; STONE, L.F; AIDAR, H. Integração Lavoura-Pecuária. Santo Antônio de Goiás: Embrapa Arroz e Feijão, 2003. 570p. TURCO, R.F.; KENNEDY, A.C.; JAWSON, M.D. Microbial indicators of soil quality. efining soil quality for a sustainable environment. Soil Science Society of America, Madison, p.73-90, 1994. y = -23507x + 30544R2 = 0,2526025005000750010000125001500017500200000,00 0,20 0,40 0,60 0,80 1,00 1,20Atividade enzimática (ug FDA hid g-1 solo seco h-1)Fusarium solani (ppg) A y = -0,0446x2 + 3,0773x + 21,356R2 = 0,5960204060801000 20 40 60 80N da biomassa microbiana (mg / kg solo)Germinação carpogênica de escleródios de Sclerotinia sclerotiorum (%)B Documentos, IAC, Campinas, 85, 2008  980 VAN BRUGGEN, A.H.C.; SEMENOV, A.M. In search of biological indicators for soil health and disease suppression. Applied Soil Ecology, Amsterdam, v.15, p.13-24, 2000. VANCE, E.D.; BROOKES, P.C.; JENKINSON, D.S. An extraction method for measuring soil microbial biomass C. Soil Biology and Biochemistry, Oxford, v.19, n.6, p.703-707, 1987.  Área: Fitopatologia 

Relação de indicadores biológicos de qualidade de solos com Fusarium spp., Rhizoctonia solani e Trichoderma spp. em uma área sob integração lavoura-pecuária.

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