CARRÃO-PANIZZI, M. C.

CRANCIANINOV, W. S.

FREITAS, A. M.

MANDARINO, J. M. G.

SANTANA, A. C.

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162 	Embrapa Soja. Documentos, 268 Composição química de grãos de soja em estádio R-7 danificados por percevejo da soja Wladimir S. Crancianinov 1 ; Adriana M. Freitas 1 ; Andreia C. Santana'; José Marcos Gontijo Mandarino 2 ; Mercedes Concórdia Carrão-Panizzi 2. ' UEL; 2 Embrapa Soja. A soja é o principal produto agrícola de exportação do Brasil, sendo res-ponsável pela alta tecnologia e crescimento do agronegócio brasileiro. A cultura da soja está sujeita a vários fatores climáticos, ambientais e bioló-gicos tais como o ataque de doenças e pragas(CARRÁO-PANIZZI et ali 1999). O percevejo da soja é uma praga importante, implicando em per-das econômicas consideráveis. Cultivares tardias são mais susceptiveis ao ataque dos percevejos, já que, com a colheita das cultivares precoces, ocorre um aumento da pressão de pragas nestas cultivares tardias. Ao sugar o grão, o percevejo injeta toxinas no grão, bem como favorece o desenvolvimento de um fungo, causando uma série de reações que podem alterar a composição quími-ca do grão. O objetivo desse estudo foi comparar a composição de proteína, lipídios, inibidor de tripsina Kunitz e isoflavonas, em grãos de soja em estádio R7, danificados e não danificados por percevejos. Material e Métodos Grãos da linhagem BRM94-52273, colhidos em Ri em março de 2005, foram analisados para determinação de suaa composição química. As análises foram conduzidas em base úmida e base seca; as proteínas fo-ram analisadas pelo método de micro Kjeldahl, os lipídios por extração no destilador de Soxhlet, a umidade pelo método gravimétrico (AOCS, 1988). Na determinação do teor de inibidor de tripsina Kunitz foi utilizado o méto-do de Kakade et al.(1 973), modificado por Hamerstrand et al.,(1981). A Jornada académica da Embrapa Soja 	 163 separação e a quantificação das isoflavonas foram realizadas em coluna de fase reversa do tipo ODS 018 (YMC Pack ODS-AM Columm), utilizan-do-se um cromatógrafo liquido da marca Waters, modelo 2690, com injetor automático de amostras. Para a separação das isoflavonas, foi utilizado o sistema de gradiente linear binário, tendo-se como fases móveis: metanol contendo 0,025% de ácido TFA (ácido trifluoroacético) (solvente A) e de H 20 destilada deionizada ultrapura contendo 0,025% ácido TFA (solvente 3). A condição inicial do gradiente foi de 20% para o solvente A, atingindo-se 100% em 40 min e retornando à 20% novamente a 41 min. O tempo total de corrida foi de 60 mm. A vazão da fase móvel foi de 1 mL/min e a temperatura durante a corrida foi de 25 ÚC. Para a detecção das isoflavonas, foi utilizado o detector de arranjo de foto diodo da marca Waters, modelo 996, ajustado para o comprimento de onda de 260 nm. Para a identificação das isoflavonas foi utilizada uma mistura dos padrões de daidzina, daidzeína, genistina e genisteína da marca Sigma. Esta solu-ção foi preparada em metanol contendo um mix dos glicosídeos nas se-guintes concentrações: 0,00625 mg/mL; 0,0125 mg/mL; 0,0250 mg/mL; 0,0500 mg/mL e 0,1000 mg/mL. A quantificação das isoflavonas por pa-dronização externa (área dos picos) foi realizada utilizando os padrões como referência, de acordo com a metodologia preconizada por Berhow, M., (2002). Resultados Os resultados mostraram um aumento no teor de umidade da soja danificada, como conseqüência do dano e desenvolvimento do fungo no grão. A proteína não teve nenhuma alteração considerável, assim como os lipídios. O teor de inibidor de tripsina na soja danificada aumentou em relação à soja sadia. O teor das isoflavonas totais na soja danificada foi reduzido, enquanto que as formas agliconas aumentaram em relação à soja sadia. A gliciteina só foi detectada na soja danificada. Em grãos ma-duros de soja, a concentração de agliconas é insignificante, sendo que o aumento na concentração destes compostos nos grãos danificados pode ser devido à ativação da enzima b-glicosidase, responsável pela forma-ção das formas agliconas na soja(CARRÀO-PANIZZI ei. ai., 2000). 164 	Embrapa Soja. Documentos, 268 Referências Bibliográficas AOCS. Official Methods and Recommended Practices oftheAmerican Oil Chemists' Society. 3. ed. Champaign, 1988. v.1-2. BERHOW, M. A. Modern analytical techniques for fiavonoid determination. ln: BUSLIG, B. S.; MANTHEY, J. A. (ed.). Flavonoids in the living cell. New York: Klusher Academic, 2002. p.61-76. (Adv. Exp. Méd. Biol. v. 505). CARRÁO-PANIZZI, MC.; BELÉIA, A. D. R; KITAMURA, K.; OLIVEIRA, M.C.N. Effects of genetics and environment on isofiavone content of soybean from different regions of Brazfl. Pesquisa Agropecuária Brasi-leira, Brasília, v. 34, n. 10, p. 1787-1795, 1999. CARRÁO-PANIZZ1, MC.; BORDIGNON, J.R. Activity of beta-glucosidase and leveis of isofiavone glucosides in soybean cultivars affected by the environment. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasilia, v. 35, n.5, p. 873-878, 2000. HAMERSIRAND, G.E.; BLACK, L.T.; GLOVER, J.D. Trypsin inhibitors in soy products: modification of the standard analytical procedure. Cereal Chemistry, Saint Paul, v. 51, n. 1, p. 42-45, 1981. KAKADE, ML.; RACKIS, J.J.; McGHEE, J.E.; PUSKI, G. Determination of trypsin inhibitor analysis of an improved procedure. Cereal Chemistry, Saint Paul, v. 51, n.3 p. 376-382, 1974. 

Composição química de grãos de soja em estádio R-7 danificados por percevejo da soja.

http://www.alice.cnptia.embrapa.br/alice/bitstream/doc/469403/1/ID26418.pdf

Composição química de grãos de soja em estádio R-7 danificados por percevejo da soja.

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