Publicado também: FRAZÃO, D. A. C.; HOMMA, A. K. O; VIÉGAS, I. de J. M. (Ed.). Contribuição ao desenvolvimento da fruticultura na Amazônia. Belém, PA: Embrapa Amazônia Oriental, 2006. p. 543-548

CARVALHO, C. J. R. de

CARVALHO, J. E. U. de

RIBEIRO, M. A. C.

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Relações Hídricas de Gravioleiras (Annona muricata L.) Jovens em Porta-Enxertos dos Gêneros Annona e RolliniaCláudio José Reis de Carvalho[1];José Edmar Urano de Carvalho[2]; Marco Antonio Costa Ribeiro[3]IntroduçãoNas regiões tropicais, a falta de água é um dos principais fatores de restrição à produtividade das culturas.  Em se tratando de plantas enxertadas,principalmente quando a combinação enxerto – porta-enxerto envolve espécies diferentes, a economia hídrica torna-se ainda mais complexa, pois além dosfatores da interação planta–solo, existe o  transporte através do xilema do caule, o qual pode apresentar problemas de conexão de vasos e mesmo dedimensionamento entre a parte aérea demandante por água e o sistema radicular.A  propagação  por  enxertia  constitui-se  em  prática  bastante  difundida  na  fruticultura,  por  permitir  a  reprodução  integral  de  genótipos  comcaracterísticas genéticas superiores e reduzir a fase juvenil das plantas. Além disso, pode trazer outros benefícios, tais como: redução do porte das plantas,tolerância a doenças e maior efetividade na absorção de nutrientes. O aspecto da absorção e transporte de água é sempre questionado pois se, em algunscasos, a combinação entre enxerto e porta-enxerto é vantajosa, em outros pode não ser.            Na propagação da gravioleira, por enxertia, o porta-enxerto mais utilizado é a própria gravioleira, embora o araticunzeiro-do-brejo (Annona glabra L)seja, freqüentemente, citado como excelente opção, pois apresenta características ananicantes, conferindo à gravioleira porte baixo (Pinto & Silva, 1994).Outras espécies que têm demonstrado boa afinidade com a gravioleira são: o araticunzeiro (Annona montana Macf.) e o biribazeiro (Rollinia mucosa (Jacq.)Baill) (Ferreira & Clement, 1987).Este trabalho teve como objetivo estudar os efeitos do déficit hídrico induzido em casa de vegetação sobre o crescimento e economia de água degravioleiras jovens enxertadas sobre diferentes espécies de anonáceas.Material e MétodosPlantas de gravioleira foram produzidas por enxertia sobre porta-enxertos de araticunzeiro-do-brejo (Annona glabra), araticunzeiro (Annona montana),gravioleira (Annona muricata) e biribazeiro  (Rollinia mucosa). A enxertia foi realizada pelo método de borbulhia em placa, em porta-enxertos com 6 mesesde idade, cultivados em sacos de plástico com dimensões de 35 cm de altura e 18 cm de largura, contendo como substrato a mistura de solo (60%), pó deserragem (20%) e esterco curtido (20%). Dois meses após a enxertia, foram selecionadas dez plantas uniformes, de cada combinação enxerto – porta-enxerto, as quais foram transplantadaspara vasos de plástico, com capacidade para 20 litros, contendo como substrato a mistura de solo, areia e esterco curtido, na proporção volumétrica 2:1:0,5.Essas plantas foram mantidas em casa de vegetação  (PARmax = 1.200 µmol de fótons.m-2.s-1,  temperatura 36/24 °C e UR ≥ 60%), durante 40 dias,adubadas semanalmente, por via líquida, com uma formulação comercial contendo 6,0% de N;  6% de P2O5; 8,0% de K2O; 0,5% de Mg; 0,5% de S; 0,03%de B; 0.05% de Zn; 0,1% de Fe e 0,03% de Mn. Essa formulação foi previamente diluída na proporção de 2 mL por litro de água, adicionando-se, em cadavaso, um litro da solução. A irrigação das plantas foi efetuada, durante essa etapa, de tal forma a manter o substrato com 80% da capacidade de campo(previamente determinada).O ensaio foi conduzido em delineamento em blocos ao acaso com cinco repetições, onde foram comparados os quatro porta-enxertos, mantendo-seum grupo na condição de 80% da capacidade de campo e outro sob déficit hídrico imposto pela suspensão da irrigação.A área foliar estimada foi obtida através do produto do comprimento e maior largura de folhas obtidas com plantas extras das mesmas combinaçõescultivadas paralelamente, nas mesmas condições dos indivíduos usados no experimento. A área real foi medida a partir de imagens das mesmas folhasusadas anteriormente, digitalizadas em “scanner”, usando o programa SIARCS v.3 (Jorge, 1996). Esta relação foi usada no cálculo da área foliar específica.A cada quatro dias foi avaliado o potencial hídrico, antes do amanhecer e às 14horas, usando bomba de pressão digital[4] em uma folha madura,selecionada nas posições 3 a 6 a partir o ápice do ramo. Para essas determinações, as folhas foram envolvidas com papel alumínio, no final da tarde davéspera do dia da mensuração, para formação de câmara escura. A remoção da cobertura de alumínio foi efetuada no momento das determinações.Ao final de 16 dias de secamento, as plantas foram reidratadas e mantidas na casa de vegetação até o 18º dia, quando foram cortadas em folhas,caule (no ponto de inserção do enxerto) e raízes. As folhas e hastes foram secadas a 70 °C.  As raízes foram lavadas e seu volume foi avaliado pelo métodode deslocamento de coluna líquida a 25 °C.  Após esta avaliação, as raízes foram secadas de maneira semelhante ao descrito anteriormente.Após a recuperação do déficit, a fotossíntese máxima das folhas maduras foi medida com analisador de infravermelho LI6400[5] (PAR = 1.000 µmolde fótons.m-2.s-1, Temp. 32 °C, UR ≥ 60% e CO2 = 360ppm).  Foram estabelecidas também, curvas de calibração entre os teores de clorofila total, clorofila ae clorofila b dosadas, extraídas com acetona a 80% (Arnon, 1949) e leituras do medidor automático de clorofila SPAD – 520.Resultados e DiscussãoA equação derivada para obtenção da área foliar real de folhas de gravioleiras, através do produto do comprimento e larguras máximas das folhas(Fig. 1 A) mostrou excelente sensibilidade e precisão, independente do porta-enxerto.RELAÇÕES HÍDRICAS DE GRAVIOLEIRAS JOVENS EM DIFERENTES PORTA-ENXERTOS file:///D|/dados/Titulo/701-800/626.htm1 de 3 17/5/2013 08:53As curvas de calibração entre os valores de clorofila e leituras do SPAD 502 (Fig. 1B), não foram influenciadas pelos diferentes porta-enxertos eportanto os dados obtidos para folhas de todos eles foram usados no ajuste.  As equações de regressão mostram que a sensibilidade do método é maiorpara a determinação da clorofila total e que, embora os coeficientes de determinação sejam altos, a inclinação obtida para as clorofilas a e b são menores.A suspensão da irrigação induziu o estabelecimento gradual do déficit hídrico nas plantas, revelado pela redução, praticamente linear, dos valores dopotencial hídrico de base, atingindo valores em torno de –3,5 MPa aos 13 dias. Não foram detectadas diferenças significativas, neste aspecto, entre osdiferentes porta-enxertos testados, apesar de haver diferença entre os volumes de raízes entre eles (Fig. 2A).Os diferentes porta-enxertos induziram modificações na massa por unidade de área das folhas, que é a área foliar especifica (Fig. 2B) das folhas degravioleira mantidas sob rrigação.Em geral,  a AFE tem influência nas taxas de fotossíntese. Porém, nas condições do ensaio, não  foram detectadas diferenças significativas nafotossíntese máxima das folhas das plantas irrigadas de gravioleira mantidas sobre diferentes porta-enxertos (Fig.3A).  Apesar disso, o tratamento de secainduziu maiores modificações na alocação de biomassa das plantas enxertadas sobre R. mucosa e, praticamente, não alterou a alocação na combinaçãoenvolvendo A. muricata sobre A muricata. Os resultados obtidos para a taxa de fotossíntese instantânea, clorofila total e eficiência fotoquímica (Fv/Fm)revelaram que, mesmo após três dias de reidratação os danos causados pelo período de secamento não foram reparados e que as plantas enxertadas sobreR. mucosa foram as mais afetadas.ConclusõesAs equações derivadas para área foliar e conteúdo de clorofila podem ser usadas em outros estudos com gravioleiras;Nas condições do ensaio, não foram detectadas influências negativas de uma espécie de porta-enxerto típica de áreas alagadas (A. glabra) e de umatípica de terra-firme (A. montana), nas relações hídricas da parte aérea de A. muricata;A combinação envolvendo A. muricata sobre R mucosa foi a de pior comportamento sob condições de déficit hídrico;Referências BibliográficasARNON, D.I.  Copper enzymes in isolated chloroplasts:  Polyphenoloxidase in Beta vulgaris.  Plant Physiology, v.24, n.1, p.1-15, 1949.FERREIRA,  S.A.  de N.;  CLEMENT,  C.R.  Avaliação  de diferentes  porta-enxertos  para a  gravioleira na Amazônia central.  I.  Métodos de enxertia.  In:RELAÇÕES HÍDRICAS DE GRAVIOLEIRAS JOVENS EM DIFERENTES PORTA-ENXERTOS file:///D|/dados/Titulo/701-800/626.htm2 de 3 17/5/2013 08:53CONGRESSO BRASILEIRO DE FRUTICULTURA, 9., 1987, Campinas. Anais... Campinas: Sociedade Brasileira de Fruticultura,  1987. v.2. p. 475-479.JORGE, L. A. DE C.  Recomendações práticas para utilização do SIARCS 3.0 nos estudos de raízes, cobertura vegetal, folhas e outras aplicações.São Carlos: EMBRAPA-CNPDIA, 1996. 22p. (EMBRAPA-CNPDIA. Recomendação Técnica, 4)PINTO,  C.A.Q.;  SILVA,  E.M.  da.  Graviola  para exportação:  aspectos  técnicos  da produção.   Brasília:  EMBRAPA-SPI:  FRUPEX,  1994.  (FRUPEX.Publicações Técnicas,  7).[1] Eng. Agrôn., D.Sc. Ecofisiologia Vegetal,  Pesquisador da Embrapa Amazônia Oriental, Caixa Postal 48, CEP 66 017-970, Belém,  PA. E-mail:  carvalho@cpatu.embrapa.br[2]  Eng.Agrôn., M.Sc. Agronomia, Pesquisador da Embrapa Amazônia Oriental, Caixa Postal 48, CEP  66 017-970, Belém,  PA. E-mail: urano@cpatu.embrapa.br[3] Estudante de Agronomia da Faculdade de Ciências Agrárias do Pará, Bolsista do Convênio PIBIC/CNPq/Embrapa Amazônia Oriental. E-mail: macr@nautilus.com.br[4] Wagtech ARI (Wagtech International Ltd, Newbury, Berkshire, U.K.)[5] LICOR Inc. Nebraska, EUA.RELAÇÕES HÍDRICAS DE GRAVIOLEIRAS JOVENS EM DIFERENTES PORTA-ENXERTOS file:///D|/dados/Titulo/701-800/626.htm3 de 3 17/5/2013 08:53

Relações hídricas de gravioleiras (Annona muricata L.) jovens em porta-enxertos dos gêneros Annona e Rollinia.

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