CAMPOS, T. de

CARDOSO, M. R. de I.

KICH, J. D.

PISSETTI, C.

WERLANG, G. O.

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 Anais do ABRAVES 2013  Boas VindasCongresso AbravesFórum SuinoculturaFeira TecnológicaComissõesPalestrantesTemas e SubtemasTrabalhos CientíficosProgramação CientíficaProgramação FórumPatrocinadoresFale Conosco Trabalhos CientíficosRESISTÊNCIA ANTIMICROBIANA DE ESCHERICHIA COLI E ENTEROCOCCUS SP.ISOLADOS DE CARCAÇAS SUÍNAS NA ETAPA DE PRÉ-RESFRIAMENTOAutores:Kich, J. D. - Jalusa Deon Kich - Embrapa Suínos e AvesPissetti, C. - Caroline Pissetti - UFRGSCampos, T. - Thais de Campos - UFRGSWerlang, G. O. - Gabriela Orosco Werlang - UFRGSCardoso, M. - Marisa Cardoso - UFRGSTema:4 - Segurança AlimentarModalidade de Aprovação:OralArquivo do e-pôster:[abrir]INTRODUÇÃO: A competitividade no mercado e a valorização mundial da carne suína exigemque o conceito de qualidade e inocuidade dos alimentos seja observado. Sendo assim, omonitoramento da resistência antimicrobiana, tanto em bactérias patogênicas quantocomensais, é essencial para controlar o risco de sua transmissão na cadeia alimentar [1]. Nestesentido, o objetivo do estudo foi avaliar a frequência de resistência antimicrobiana em amostrasde E.coli e Enterococcus isoladas de carcaças suínas.MATERIAL E MÉTODOS: Oitenta e quatro carcaças foram amostradas na etapa depré-resfriamento, em três abatedouros de suínos localizados em Santa Catarina, totalizando252 carcaças [3]. Após a adição de 40 mL de água peptonada 0,1%, alíquotas foramtransferidas para ágar VRBA e ágar KF Streptococcus, para isolamento de E.coli eEnterococcus, respectivamente. Para pesquisa do gênero Enterococcus foi realizada aamplificação do gene tuf [10], e para espécie E.faecalis, amplificação do gene ddlE.faecalis [8].As amostras foram submetidas ao teste de sensibilidade antimicrobiana através de disco-difusão em ágar [6, 7]. Os isolados de E.coli foram testados frente aos antimicrobianos:ampicilina (10µg), ceftazidima (30µg), cefotaxima (30µg), gentamicina (10µg), florfenicol (30µg),ácido nalidíxico (30µg), tetraciclina (30µg) e sulfonamida (300µg). Amostras resistentes acefotaxima e/ou ceftazidima foram confirmados fenotipicamente para produção deβ-lactamases de amplo espectro (ESBL) [7], e genotipicamente através da amplificação dosgenes blaTEM e blaPSE, codificadores de β-lactamases [5]. Isolados de Enterococcus foramtestados para ampicilina (10µg), ciprofloxacina (5µg), cloranfenicol (30µg), eritromicina (15µ),teicoplanina (30µg) tetraciclina (30µg), vancomicina (30µg), estreptomicina (300µg) egentamicina (120µg).RESULTADOS: Dos 319 isolados de E.coli testados, 12,8% foram sensíveis a todos osantimicrobianos. A frequência mais elevada de resistência foi à tetraciclina (79,3%),sulfonamida, florfenicol (64,9%), e ampicilina (64,3%). Cinco isolados apresentaram perfilresistente/intermediário à cefotaxima/ceftazidima, mas apenas um isolado foi confirmado noteste fenotípico para ESBL e três na reação de PCR para o gene blaTEM. Todas as colôniastípicas de Enterococcus foram confirmadas por PCR. Duzentos e dezessete isolados (90,8%)foram identificados como E. faecalis, sendo todos sensíveis aos glicopeptídeos (teicoplamina evancomicina) e ampicilina. Por outro lado, apresentou elevada resistência frente à tetraciclina(42,5%), eritromicina (26,7%) e estreptomicina (20,4%).DISCUSSÃO: A resistência à tetraciclina foi a mais frequente tanto em E.coli quanto emEnterococcus. No Brasil, essa resistência é comum em amostras de Salmonella isoladas desuínos [12]. Como os três gêneros colonizam o intestino, pode-se sugerir que esses micro-organismos são expostos à mesma seleção antimicrobiana. Em relação a E.coli, os isoladosresistentes à tetraciclina apresentaram resistência a ampicilina e sulfonamidas, sugerindo queos genes de resistência podem estar localizados em cassetes gênicos, conferindo multi-XVI Congresso ABRAVES file:///C|/Users/tcelant/Desktop/abraves 2013/trabalhos/111.html1 de 2 29/11/2013 10:40resistência a esses micro-organismos [13]. Em nosso estudo também foi observada essaassociação na maioria dos isolados de E.coli, embora o uso desses antimicrobianos comopromotores de crescimento está proibido desde 1998 [2]; no entanto, esses princípios ativossão utilizados como terapêuticos na suinocultura. Observou-se um baixo número de isolados deE.coli ESBL-positiva, indicando que este fenótipo de resistência não é frequente. Enterococcusfoi incluído devido à importância como reservatório de genes de resistência contraantimicrobianos utilizados no tratamento de bactérias Gram-positivas [9]. A alta frequência deisolados resistentes à eritromicina é motivo de preocupação, uma vez que os genes erm,codificadores do principal mecanismo de resistência aos macrolídeos, conferem resistênciacruzada ao grupo macrólideo-lincosamidas-estreptograminas (MLSB), importantes notratamento de infecções bacterianas em humanos. Isolados de Enterococcus resistentes àeritromicina constituem risco para saúde pública, uma vez que descreveram clones comunsentre suínos e humanos [11]. Nesse contexto, o uso de eritromicina como promotor decrescimento foi proibido no Brasil [4], de forma a evitar a seleção de cepas resistentes.CONCLUSÃO: Os isolados analisados apresentaram resistência frente aos antimicrobianosutilizados na terapêutica humana e animal.REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS[1] Apley, M. Role of veterinary therapeutics in bacterial resistance development. JAVMA,212:1209-1213. 2001. [2] Brasil, Portaria SVS/MS 818. 1998. [3] Brasil, Circular nº 130. 2007.[4] Brasil, IN nº 14. 2012. [5] Carlson, S. et al. Detection of multi resistant S. TyphimuriumDT104 using multiplex and fluorogenic PCR. Mol Cell probes. 13:2013-222. 1999. [6] CSLI.M31-A3. 2008. [7] CLSI. M100-S22, 2012. [8] Dutka-Malen, S. et al. Detection of glycopeptideresistance genotypes and identification to the species level of clinically relevant enterococci byPCR. J.Clin.Microb. 33:24-27. 1995. [9] Dzidic, S. et al. Antibiotic resistance mechanisms inbacteria: biochemical and genetic aspects. FoodTechn.Biotech. 46:11-21. 2008. [10] Ke, D. etal. Development of a PCR assay for rapid detection of Enterococci. J.Clin.Microb.37:3497-3503. 1999. [11] Larsen, J. et al. Porcine and human community reservoirs ofEnterococcus faecalis, Denmark. Emerg.Infec.Diseases,17:2395-97, 2011. [12] Mürmann, L. etal. Prevalence, genetic characterization and antimicrobial resistance of Salm. isolated from freshpork sausages in Porto Alegre, Brazil. F.Control. 20:191-195. 2009. [13] Thorsteinsdottir, T. et al.Prevalence and genetic relatedness of antimicrobial-resistant E.coli isolated from animals, foodsand humans in Iceland. Zoon.Pub.Health. 57:189-196. 2010.Palavras-chave: carcaça, resistência antimicrobiana, suínos Voltar para a listagem de ResumosPromoção:Realização:Organização: R. Américo Salgado, 727-Quilombo, Cuiabá-MTCEP: 78.043-420Tel : (65) 3621-1314| Faça contato aqui! |Agência Oficial:Patrocinadores (Maternidade)Patrocinadores (Terminação) Patrocinadores (Crescimento)Apoio Institucional:   Desenvolvido por Zanda Multimeios da InformaçãoXVI Congresso ABRAVES file:///C|/Users/tcelant/Desktop/abraves 2013/trabalhos/111.html2 de 2 29/11/2013 10:40

Resistência antimicrobiana em Escherichia coli e Enterococcus sp. isoladas de carcaças suínas na etapa de pré-resfriamento.

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