CASELA, C. R.

COSTA, R. V. da

FERREIRA, A. da S.

SILVA, D. D. da

Repository Open Access to Scientific Information from Embrapa

Ocorrência de Podridão de Colmo (Colletotrichum Graminicola) em Genótipos de MilhoAlexandre da Silva Ferreira1. Rodrigo Véras da Costa2. Carlos Roberto Casela3 e Dagma Dionísiada Silva41,2,3Pesquisadores EMBRAPA-CNPMS, CP. 285, CEP 35701-970, Sete Lagoas-MG.1ferreira@cnpms.embrapa.br, 2veras@cnpms.embrapa.br 3casela@cnpms.embrapa.br.4Acadêmica UFLA e bolsista CNPq. ddionisia@yahoo.com.brPalavras-chave: Zea mays L., Colletotrichum graminicola, podridão do colmo.Dentre os principais patógenos que causam podridão de colmo em milho,destaca-se o fungo Colletotrichum graminicola, agente etiológico da antracnose (Bergstron &Nicholson, 1999). A doença é mais severa em plantas após a fase de florecimento, causandoperdas significativas em produtividade, constituindo-se um dos principais desafios aos programasde melhoramento genético desta cultura (Venard & Vaillancourt, 2007).Gatch et al. (2002) verificaram que híbridos Bt foram mais suscetíveis a C.graminicola quando comparados a híbridos convencionais, evidenciando-se a necessidade debuscar novas estratégias para o controle dessa doença. Desse modo, é importante que se conheçacomo o patógeno se distribui na planta, seu comportamento em relação a híbridos resistentes esuscetíveis e a influência do ambiente sobre a doença. O objetivo deste trabalho foi avaliar aincidência de C. graminicola quanto a sua posição em colmo de genótipos de milho, emdiferentes épocas de plantio.Os ensaios foram conduzidos no campo experimental do Centro Nacional dePesquisa de Milho e Sorgo – CNPMS – Embrapa, em Sete Lagoas – MG, nas safras: verão2005/2006, safrinha de 2006 e verão 2006/2007. Foram utilizados 18 híbridos de milho daEMBRAPA e de outras empresas (Tabela 1). A semeadura, em todos os experimentos, foirealizada no sistema de plantio direto sobre palha de milho, com espaçamento de 0,8 m entrefileiras e, aproximadamente, cinco plantas por metro. A adubação de base, nos três experimentos,foi de 300 Kg/ha da fórmula 4-30-16 (N-P-K) + Zn. As adubações de cobertura foram realizadasaos 20 e 30 DAE, através da aplicação de 40 kg/ha de nitrogênio na forma de uréia.Foi utilizado o delineamento experimental de blocos ao acaso com 18tratamentos e três repetições. Cada parcela foi constituída de três linhas de cinco metros.De três plantas, distribuídas ao longo da linha central da parcela, foramcoletados fragmentos de colmo, para isolamento em laboratório. Em cada planta foram coletadostrês entrenós do colmo, os quais foram: o segundo entrenó acima do solo, o entrenó de inserçãoda espiga e o entrenó localizado logo abaixo do pendão. Os entrenós foram raspados,principalmente na junção da bainha, e lavados com detergente em água corrente. Posteriormente,foram mantidos em condição ambiente para secagem e desinfestados, superficialmente,pulverizando-os com álcool 70% seguido de flambagem. Após a retirada de parte da casca,quatro fragmentos da parte interna de cada entrenó foram transferidos para placas de petricontendo meio de aveia. As placas foram mantidas em câmara de incubação sob luz fluorescentecontínua e temperatura de 25 ºC. A identificação e a quantificação do patógeno foram realizadasapós três a quatro dias de incubação.Tabela 1. Relação e descrição dos genótipos de milho utilizados para a condução dosexperimentos.Genótipos Empresa Genótipos EmpresaBR 201 Empresa BRS 2020 EmbrapaBR 205 Embrapa BRS 1001 EmbrapaBR 206 Embrapa BRS 3003 EmbrapaBRS 3123 Embrapa BRS 2223 EmbrapaBRS 2110 Embrapa BRS 1030 EmbrapaBRS 3150 Embrapa BRS 1031 EmbrapaBRS 2114 Embrapa BRS 1035 EmbrapaBR 106 Embrapa P30F80 PioneerBRS 1010 Embrapa AG 1051 Monsanto Verificou-se, nas três safras, uma variação na incidência de C. graminicolavariando de 26,3 a 62,5%, com o valor médio de 44,6% (Figura 1). As menores incidênciasmédias foram verificadas para os híbridos BR201 e BR206, com valores abaixo de 30%. Oshíbridos BR205, BRS2110, BRS2114, BRS1035 e P30F80, mantiveram níveis entre 30 e 40% e amaior incidência foi observada para o híbrido BRS1010, com valor acima de 60%. Observou-seque na safra de verão 2006/2007, a incidência de C. graminicola apresentou um padrãosemelhante ao observado na safra de verão 2005/2006, embora com valores mais elevados. Nasafrinha, os valores de incidência foram menores em relação às safras de verão, exceto para oshíbridos BRS1010 (74,76%) e BRS2223 (63,87%) (Figura 2).010203040506070BR 201BR 205BR 206BRS 3123BRS 2110BRS 3150BRS 2114BR 106BRS 1010BRS 2020BRS 1001BRS 3003BRS 2223BRS 1030BRS 1031BRS 1035P30F80AG 1051%ABFigura 1. Incidência média (safra 2005/2006, safrinha 2006 e safra 2006/2007) deColletotrichum graminicola, causando podridão de colmo em diferentes genótipos de milho.A incidência média de C. graminicola isolados do entrenó da base do pendão,do entrenó de inserção da espiga e do segundo entrenó acima do solo foi de 51,6, 45,8 e 35,2 %,respectivamente. A maior incidência do patógeno em relação à posição no colmo ocorreu noterço médio superior, exceto para os híbridos BR205, BR106, BRS1001 e AG1051, os quaisapresentaram uma maior incidência na base do colmo. Nos híbridos BR206, BRS1010, BRS1001e AG1051, a incidência do patógeno na parte mediana foi maior que a observada na base e partesuperior do colmo. De modo geral, observou-se que o patógeno distribuiu-se amplamente portoda a extensão do colmo.Segundo Gilbertson et al. (1985), C. graminicola e Giberella zeae são ospatógenos mais agressivos dentre as espécies causadoras de podridão de colmo em milho. Osresultados obtidos em Sete Lagoas corroboram com a observação dos referidos autores. A médiageral obtida entre as safras e os híbridos avaliados evidencia a predominância de C. graminicolacomo agente causal da podridão do colmo do milho.Figura 2. Incidência de C. graminicola em diferentes genótipos de milho nas safras: verão2005/2006 (A), Safrinha 2006 (B) e verão 2006/2007 (C).0102030405060708090SuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorBR 201 BR 205 BR 206 BRS 3123 BRS 2110 BRS 3150 BRS 2114 BR 106 BRS 1010%01020304050607080SuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorSuperiorMédioInferiorBRS 2020 BRS 1001 BRS 3003 BRS 2223 BRS 1030 BRS 1031 BRS 1035 P30F80 AG 1051%Figura 3. Incidência média de C. graminicola em híbridos de milho considerando diferentesposições no colmo das plantas: 1) Superior: Isolamento realizado no entrenó da base do pendão;2) Médio: isolamento realizado no entrenó de inserção da espiga no colmo; e 3) Inferior:isolamento realizado no segundo entrenó acima do solo. Os valores são correspondentes àsmédias das três safras. Segundo Denti et al. (2002), a incidência de C. graminicola ocorre por todo ocolmo, porém com maior freqüência e intensidade na base da planta. Os resultados obtidos nopresente trabalho demonstram que C. graminicola ocorre em toda a extensão do colmo, compredominância no terço médio superior. A ocorrência de podridão de colmo é resultante deinfecções primárias nas raízes (Sukno et al,.2008) e folhas (Venard & Vaillancourt, 2007).Portanto, é provável que a posição em que o fungo ocorre com maior frequência no colmo estejarelacionada à origem do inóculo. Entretanto, permanecem dúvidas sobre os fatores que controlama ocorrência  dos sintomas de “dieback” e a relação deste com a resistência em genótipos demilho.De acordo com os resultados deste trabalho, conclui-se que a incidência depodridão do colmo está relacionada com o genótipo e as condições ambientais em cada safra. Emgenótipos suscetíveis, C. graminicola ocorre amplamente por toda extensão do colmo causandoseca precoce da planta. Apesar da variação observada entre os genótipos avaliados nas diferentesépocas de plantio quanto a incidência da antracnose no colmo, nenhum híbrido pôde serconsiderado como resistente ao patógeno. Referências bibliográficasBLUM, L.E.B.; SANGOI, L.; AMARANTE, C.V.T. DO; ARIOLI, C.J.; GUIMARÃES, L.S.Desfolha, população de plantas e precocidade do milho afetam a incidência e a severidade depodridões do colmo. Ciência Rural, v. 33, n. 5, p. 805 - 811. 2003.DENTI, E.A.; REIS, E.M.; FORCELINI, C.A. Reação de genótipos de milho às podridões dabase do colmo (PCB). Summa Phytopathologica, v. 28, n. 3, p. 286 – 288. 2002.GATCH, E. W., HELLMICH, R. L., MUNKVOLD, G. P. A. Comparison of maize stalk rotoccurrence in Bt and non-Bt hybrids. Plant Disease, V.86, p.1149-1155, 2002.GILBERTSON, R.L., BROWN, W.M.JR.; RUPPEL, E.G. Prevalence and virulence of F.moniliforme. associated with stalk rot of corn in Colorado. Plant Disease, St. Paul, v. 69, p. 1065– 1068. 1985.REIS, E.M.; CASA, R.T. Manual de identificação e controle de doenças do milho. Passo Fundo:Aldeia Norte, 1996. 78p.SUKNO, S.A.; GARCÍA, V.M.; SHAW, B.D.; THON, R.M. Root infection and systemiccolonization of maize by Colletotrichum graminicola. Applied and EnviromentalMicrobiology, v. 74, n.3, p. 823-832, 2008.VENARD, C., VAILLANCOURT, L. Colonization of fiber cells by Colletotrichum graminicolain wounded maize stalks. Phytopathology, v. 97, p. 438-447, 2007.

Ocorrência de podridão de colmo (Colletotrichum graminicola) em genótipos de milho.

Abstract

Similar works

Full text

Available Versions

Repository Open Access to Scientific Information from Embrapa