Davet, Pierre

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UN PARASITE DES LECUMINEUSES NOUVEAU EN AFRIQUE 
PAR 
P. DAVET 
Au mois d’octobre 1962, nous avons constaté, dans la serre de 
1’I.D.E.R.T. à Adiopodoumé (Côte-d’Ivoire), le dépérissement rapide de 
plants de Crotolaria usaramoertsis âgés d’environ 3 mois. Le flétrisse- 
ment du feuillage était total au bout de 3 à 4 jours. 
Description des symptômes 
Les plants portent sur leur racine principale et sur les racines 
secondaires les plus développées, sur une longueur de 7 à 8 cm à partir 
du collet, un grand nombre de petits points noirs qui font saillie sous 
l’écorce. Celle-ci, soulevée, laisse apparaître de petits stromas indé- 
pendants les uns des autres mais groupés et plus ou moins alignés selon 
l’axe de la racine. 
On peut observer, sur des coupes transversales, la désorganisation 
de la zone corticale. Des filaments bruns inter et intracellulaires 
pénètrent jusqu’à la moelle par les rayons médullaires. La plupart 
des vaisseaux du bois contiennent des filaments ; certains sont obstrués 
de thylles. 
Les petits corps stromatiques noirs, homogènes mais de structure 
assez lâche, que nous assimilerons à des sclérotes, sont situés entre le 
liber et les cellules du parenchyme cortical qu’ils ont repoussées. Ils 
sont moins nombreux au niveau du collet. 
Des réactions de défense se manifestent sporadiquement dans le 
parenchyme ligneux. Elles consistent en un cloisonnement secondaire 
de cellules déjà différenciées. Mais les îlots ainsi formés, rares et sans 
lien entre eux, sont incapables de s’opposer à la pénétration du cham- 
pignon. 
Au-dessus du sol, la base de la tige est couverte de petites croûtes 
gris jaunâtre de formes irrégulières. Certaines sont sèches, d’autres ont 
un aspect glaireux. Elles sont constituées par une masse de spores 
enrobées d’une substance mucilagineuse. Plusieurs de ces fructifi- 
cations sont associées à des sclérotes analogues à ceux que nous avons 
REVUE DE PATHOLOGIE VkGkTALE 
$JO k%n sm T, b& E P . ~ N T O M O L O G I E  AGRICOLE DE FRANCE T. X L I I - ~  4 - OCTOBRE-D~CELIBRE 1963 
222 P. DAVET 
rencontrés sur les racines. Certaines racines recouvertes de sclérotes 
portent également quelques fructifications. 
Description du parasite 
La partie sporifère est constituée d’une seule couche de pseudo- 
tissu qui, en coupe, apparaît formé d’Cléments prismatiques plus ou 
moins réguliers posés à la surface du substrat. et  serrés les uns contre 
les autres. Vue par-dessus, cette assise montre une structure radiaire 
très nette. 
Plusieurs assises sporifères voisines peuvent fusionner et former 
de petites croûtes de forme irrégulière dépassant souvent 1. mm dans 
leur plus grande dimension. Dans la plupart des cas, il reste possible 
de distinguer les différents centres à partir desquels se sont constituées 
les fructifications élémentaires. 
Les spores sont hyalines, allongées, légèrement dissymétriques, 
uniseptées. Leurs extrémités sont arrondies et portent chacune une 
soie. Nous avons trouvé quelques spores anormales à extrémité bifur- 
quée. 
Les sclérotes, noirs, ont une structure très lâche et n’ont pas de 
couche corticale différenciée. Ils sont constitués d’amas de mycélium 
de type moniliforme. Ils sont sphériques ou ovoïdes. 
Ces caractères correspondent à ceux décrits par GERDEMANN 
pour le genre Leptodiscus en 1953. Les caractéristiques biométriques 
de notre spécimen sont très voisines de celles de l’espèce type : Lepto- 
discus terrestris, à laquelle nous l’identifions. 
MESURES DE SPBCID~EN 
GERDEMANN 
Longueur des spores .................................... 20-34,s p 23-34 (29,7 p) 
Largeur des spores ..................................... 4,4-7,0 p 5,0-7,7 (6,6 p) 
Longueur des soies ..................................... 8,7-18 p 15,4-25,7 (ZO,4 p) 
Diametre des sclérotcs.. ................................. jusqu’i 1 mm 130-350 
Ce champignon est répandu aux hats-Unis, particulièrement 
dans l’Illinois, où il peut se montrer très pathogène pour la Luzerne 
e t  le Trèfle. 
Comportement en culture 
Le Leptodiscus terrestris se cultive aisément sur des milieux 
artificiels à base de farine d’orge germé (Maltea) ou de pomme de 
terre. La température optimum de, développement sur pomme de 
terre gélosée est environ 28 O C .  I1 ne se développe plus à partir de 
35 oc. 
Le mycélium se colore presque aussitôt en noir; il se développe 
peu au-dessus de la surface du substrat, mais il produit des sclérotes 
en abondance à l’intérieur du milieu sur une profondeur de plusieurs 
millimètres. 
NOUVEAU PARASITE DES LÉGUMINEUSES E N  AFRIQUE ’ 223 
Le champignon ne fructifie jamais sur de tels milieux. Pour obtenir 
des spores, nous avons essayé un milieu naturel constitué par des 
fragments de tiges de Crotalaires (C*rotalavia iuncea ou C?*otalavia retuusa) 
stérilisés dans des tubes de Roux. Déposé sur la section supérieure des 
1 P 
FIG. 1 : Sclérotes et  fructifications de Leptodiscus terrestris sur un fragment de 
FIG. 2 : Coupe d’une tige au niveau d’une fructification : 
tige de Crotalaria usaramoensis. (A la loupe.) 
a)  Assise sporifère. 
b)  Deux spores en place. 
c) Mycélium intercellulaire. 
FIG. 3 : Une spore de Leptodiscus terrestris. 
FIG. 4 : Germination de spores (après 24 heures de suspension dans l’eau). 
segments, le champignon se développe rapidement. Les tiges sont 
entièrement recouvertes de sclérotes en 4 à 5 jours, à la température 
du laboratoire (26 O C ) .  Vers le septième jour apparaissent des fructi- 
fications, visibles sous forme de points jaunes brillants. Elles se forment 
224 P. DAVET 
d’abord et surtout à la partie inférieure des fragments, c’est-à-dire 
dans la région la plus humide. Les fructifications apparaissent plus 
rapidement sup les tiges jeunes que sur les tiges bgées. Sur les fragments 
dont le diamètre dépasse 6 mm, et qui sont relativement lignifiés, 
elles apparaissent tard ou même pas du tout. 
Conditions de formation des spores 
MAC VEY et GERDEMANN (1960) avaient établi que la lumière 
était indispensable à la formation des fructifications. Nous avons 
obtenus des résultats sensiblement différents en opérant de la faqon 
suivante : 
Le champignon est ensemencé comme précédemment sur des 
tiges de Crotalaire en tubes de Roux; la moitié du lot est laissée en 
lumière naturelle et sert de témoin, l’autre est placée à l’obscurité 
totale aussitôt après l’ensemencement. L’expérience a été répétée 
quatre fois, à la température du laboratoire. 
Les tiges laissées à la lumière portent des fructifications au bout 
de 7 à 8 jours. 
Dans les tubes placés à l’obscurité : 
- après 13 jours, 314 des tiges portent des fructifications; 
- après 12 jours 1 
- après 11 jours 
- après 
213 des tiges portent des fructifications ; 
9 jours, une seule tige porte des fructifications. 
Les spores dans le lot privé de lumière sont donc formées 10 à 
11 jours après l’ensemencement sur les tiges. Ainsi, il semble que 
l’obscurité retarde leur formation mais ne l’empêche pas. Par contre, 
une forte humidité est nécessaire : le champignon se développe mal et 
ne fructifie pas si les tiges restent sèches. 
Nous laisserons de côté le mode de formation des fructifications 
et la libération des spores : une étude très complète en a été faite par 
MAC VEY et GERDEMANN en 1960. 
Germination des spores 
Lorsqu’on place les spores en suspension dans de l’eau, une de 
leurs cellules émet un tube germinatif. Celui-ci peut se ramifier et se 
renfler par endroits en formant des appressoria. Au bout de 24 heures 
la longueur du filament produit peut dépasser 200 p. La deuxième 
cellule ne germe généralement pas, ou forme un tube germinatif, qui 
reste très court et ne se ramifie pas. 
La germination ne commence que 12 à 15 heures après la mise 
NOUVEAU PARASITE DES LÉGUMINEUSES EN AFRIQUE 225 
en suspension. La température optimum de germination est inférieure 
B la température optimum de croissance : elle se situe aux alentours de 
24 O c .  
Inoculations expérimentales 
- SEMIS. - Des graines de Crotalaria usaramoensis désinfectées 
à l’hypochlorite de calcium sont ensemencées aseptiquement dans 
des tubes sur le milieu synthétique de Roger. Une semaine après leur 
germination, un fragment de culture de Leptodiscus terrestris est déposé 
au voisinage du collet de chaque plantule, des tubes non inoculés 
étant conservés comme témoins. Trois jours plus tard, une tache noire 
apparaît au collet de chaque plant testé. Des sclérotes se forment le 
lendemain, ainsi qu’un petit nombre de fructifications, et leur quantité 
augmente les jours suivants. On en trouve depuis la base des racines 
jusqu’à une hauteur de 10 cm au-dessus du collet. Onze jours après 
l’inoculation, les plantules sont totalement fanées. Les tissus de la 
plante sont complètement désorganisés par les filaments mycéliens 
inter et intracellulaires, que l’on rencontre aussi bien dans le paren- 
chyme cortical que dans la moelle. I1 ne semble pas y avoir de réaction 
des tissus de l’hôte. 
- PLANTES ADULTES. - Dans un premier essai, des fragments 
de culture sont déposés contre le pivot de Crotalaria juficeu et de Cro- 
talariu retusa âgées de 2 mois, sans blessure, dans une enceinte à 
humidité saturée. 
Treize jours plus tard, un pied de Crotalaria juncea est entièrement 
fané et porte à sa base, noircie, des fructifications avec des spores de 
Leptodiscus. Les autres plants sont sains et  l’on ne peut pas en isoler 
le champignon. 
Dans un autre essai, nous avons utilisé des plants de Crotalaria 
juncea âgés d’un mois, laissés à l’air libre. Un fragment d’épiderme 
est enlevé au scalpel au sommet du pivot. Un tiers du lot reqoit des 
fragments de culture sur agay, un autre tiers des fragments de tiges de 
Crotalaire ensemencés en tube de ROUX, déposés près de la blessure; 
le reste sert de témoin. Un mois plus tard, les plants sont toujours 
sains et Y011 ne peut pas en isoler le champignon. I1 faut noter que 
cet essai a coïncidé avec la saison sèche; la diminution relative de 
l’hygrométrie pourrait être une cause de la non-pénétration du cham- 
pignon. Nous ne disposions malheureusement plus à cette [époque de 
chambre à hygrométrie contrôlée pour vérifier cette hypothèse. 
Un troisième essai fait à la même époque et dans les mêmes 
conditions sur des plants de Pkaseolus mungo de 10 jours a été égale- 
ment négatif. 
- FEUILLES DÉTACHÉES. - Des gouttes de suspension de spores 
sont déposées sur la, face inférieure ou supérieure de feuilles de Cro- 
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talaria juncea lavées, mises à flotter sur de l’eau stérile. Une tache 
brune apparaît dès le lendemain sous chaque inoculum, n’affectant 
d’abord qu’une face, puis les deux côtés du limbe. Après 2 jours, ces 
taches, de couleur brun chocolat, ont atteint leur diamètre maximum : 
5 à 6 mm, et n’évoluent plus. 
Ce brunissement semble dû à une forte réaction de la feuille, dont 
les cellules sont bourrées de tanins donnant à la tache sa couleur. Le 
développement du champignon est très limité et se borne à quelques 
ramifications après la pénétration du tube germinatif. I1 ne produit 
ni sclérotes ni fructifications. 
Le parasite n’est cependant pas tué car on peut le réisoler plusieurs 
jours après le dépôt de - la suspension de spores sur les feuilles. 
Conclusion 
A notre connaissance, la présence du Leptodiscus terrestyis n’avait 
pas encore été signalée en Afrique. I1 semble pouvoir s’adapter à des 
conditions climatiques variées, puisqu’il avait été d’abord isolé dans 
le Centre-Nord des €hats-Unis. Un taux d’humidité assez élevé paraît 
cependant nécessaire à son développement et surtout à sa fructification. 
Des premiers essais que nous avons faits, il résulte que notre isolement 
ne montre pas un pouvoir pathogène très élevé. 
SUMMARY 
Leptodisczcs terrestris GERDEMAN, an imperfect fungus, is reported for the 
It is a weak parasite of first time in Ivory Coast and; as i t  seems, in Africa. 
Crotalaria. 
BIBLIOGRAPIlIE 
GERDEMANN, 5. W. - 1952. A new root rot o€ red clover. - Phytopath., 42, 466. 
- 1953. An undescribed fungus causing a roo1 ro t  of red clover and other Legu- 
minosae. - Mycologia, 45, 548-554. 
- 1954. Pathogenicity of Leptodiscw terrestris on red clover and other Legumi- 
izosae. - Phytopath., 44, 451-455. 
Mc VEY, D. V. 6r J. W. GERDEMANN. -1960. The morphology o€ Leptodisczu terrestris, 
and the function of setae in spore dispersal. - Mycologin, 52, 193-200. 
- 1960. Host parasite relations of Leptodiscus on alfalla, red clover and birds 
foot  trefoil. - Phytopath., 50, 416-421. 
(Laboratoiye de Pathologie végétale, 
P.D.E.R.T. Adiopodoumé, Côte-d’Ivoire.) 


Un parasite des légumineuses nouveau en Afrique

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