свиноматки, супоросные свиноматки, перекисное окисление, липиды, антиоксиданты, антиоксидантная система, кровь, глутатионпероксидаза, ферменты, каталаза, пероксидазы, глутатион, полипептиды, спектрофотометрия, спектрометрия, лабораторные метод

Бобрик, Д. И.

Undetermined

Repository of Vitebsk State Academy of Veterinary Medicine

Второй тип креатинемии, наблюдавшийся у 12 % животных, ха­рактеризуется резким достоверным (Р=О,029) ростом концентрации креа­тиннина в сыворотке крови на третьи-четвертые сутки ишурии до ! 285,6 ± 212,2 мкмоль/л, что также согласуется с литературными данными и соот­ветствует терминальной стадии синдрома почечной недостаточности [4]. У таких животных патологоанатомически устанавливался диагноз: острый геморрагический нефрит. Заболевание развивалось стремительно и закан­чивалось летальным исходом. Таким образом, возникновение гиперкре;пинемии на фоне дли­тельной ишурш1 является неблагоприятным симптомом в отношении про­гноза заболевания. ЛИТЕРАТУРА. 1. В.Е. Вингфилд Секреты неотложной ветеринарной по­мощи/ пер. с англ. - М.; СПб.: «Издательство БИНОМ» - «Невский Диа­лект», 2000. -- С. 464 - 478. 2. Методы клинических лабораторных иссле­дований: Учеб. Пособие/ В.С. Камышников, О.А. Волотовская, А.Б. Хо­дюкова и др.; Под ред. В.С. Камышникова. - Мн.: Бел. наука, 2001. -··С. 477 - 484. 3. Дж. Эллиот. Хроническая почечная недостаточность у кошек. - М.: Биоинформсервис, 200 l. - 56 с. 4. Exogenous creatinine clearance as а measure of glomerular filtration rate iп dogs with reduced renal mass/ D.P. Fiпco, S.A. Brown, W.A. Crowel, J.A. Barsati// American Joнmal ofVeterinary research, 199 l. - 52, 1029. УДК: 619:618.2 ПРИМЕНЕНИЕ НАУЧНО-ОБОСНОВАННЫХ МЕТОДИК В ВЕТЕРИНАРИИ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ПЕРЕКИСНОГО ОКИСЛЕНИЯ ЛИПИДОВ И СОСТОЯНИЯ АНТИОКСИДАНТНОЙ СИСТЕМЫ В ОРГАНИЗМЕ СУПОРОСНЫХ СВИНОМАТОК БобрикД.И. УО «Витебская ордена «Знак Почёта» государственная академия ветери­нарной медицины» Процессы свободнорадикального (перекисного) окисления липи­дов в организме привлекают в настоящее время все большее внимание исследователей. Это связано с признанием решающей роли в жизнедея­тельности организма биомембран, в структуре которых важное место за­нимают липиды с высоким содержанием ненасыщенных жирных кислот. В связи с этим возникла настоятельная необходимость в анализе имеющихся методов исследования, модификации некоторых из них с це-15 РЕПЗИТОРИЙ УО ВГАВМУченые записки ВГАВМ. - 2003. - Т. 39, ч. 2лью использований для определения содержания продуктов перекисного окисления липидов, активности основных ферментов антиоксидантной защиты в тканях и крови супоросных свиноматок, а также плодов. Арсенал методов, позволяющих проводить количественное опре­деление органических перекисей, весьма широк и включает комплекс хи­мических и инструментальных методов. Однако в биологических исследо­ваниях их применение крайне ограничено. Более простой и удобной для обнаружения первичных молекулярных продуктов ПОЛ является группа методов УФ-спектрофотометрии, основанная на том, что перекисное окисление нолиненасыщенных жирных кислот сопровождается перегруп­пировкой двойных связей и возникновением системы сопряженных дие­новых структур, имеющих максимум поглощения 232-234 нм при экс­тракции вышеуказанных продуктов гептанизопропиловой смесью. Содер­жание диеновых коньюгатов (нм/г липидов) в пробе рассчитывали, учи­тывая величину молярного коэффициента экстинции, при 232 нм для со­пряженных кислот равного 2.2•105 см- 1 ·м- 1 • Для определения малонового диальдегида целесообразно исполь­зовать модификацию метода определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой, при этом образуется окрашенный триметино­вый комплекс, имеющий максимум поглощения при 532-535 нм. Расчет проводили по формуле МДА мкМ/л =Еоп • 85,47, где 85,47 - эксперимен­тальный коэффициент; Е011 - оптическая плотность пробы. [ 1] Оценку антиокислительной активности как крови, так и тканей можно определять в те<.,1-системе с яичным лецетином путем активации свободнора­дикального окисления двухвалентным железом. О результатах судили по нако­плению малонового альдегида в контрольной и опытных пробах. Расчет прово­дили по формуле АОА% = (Д,-ДО) / дк•100 , где дк -оптическая плотность контрольного раствора, ДО- оптическая плотность опьrrного раствора. [2] Определение ферментов осуществляли по методикам, используе­мым в большинстве научно - исследовательских лабораторий. Метод оп­ределения супероксиддисмутазы основывался на торможении восстанов­ления бесцветных тетразолиевых солей супероксидными анионрадикала­ми, при котором происходит их превращение в окрашенные соединения (формазаны) [4]. Метод определения глутатионпероксидазы был основан на убыли глутатиона восстановленного в инкубационной среде, которая определяется с помощью реактива Эллмана специфическим взаимодейст­вием с SH группами[б]. Глутатионредуктаза, используя восстановленные формы пиридиннуклеотидов, переводит окисленную форму глутатиона в восстановленную, и об активности глутатионредуктазы судили по убыли НАДФ+Н2 за счет восстановления окисленного глютатиона [5]. Метод определения каталазы основывается на способности перекиси водорода образовывать с солями молибдена стойкий окрашенный комплекс с мак­симумом поглощения при 41 О нм. [3] 16 РЕПОЗИТОРИЙ УО ВГАВМУченые записки ВГАВМ. - 2003. - Т. 39, ч. 2В результате проведенных исследований обобщены методические подходы в изуqении процессов перекисного окисления липидов и системы антиоксидантной зашиты организма, проанализированы имеющиеся мето­ды исследований, модифицированы некоторые из них с целью использо­ваний для определения содержания продуктов перекисного окисления липидов и активности основных ферментов антиоксидантной защиты в крови животных в условиях свиноводческих хозяйств. ЛИТЕРАТУРА. 1. Андреева Л.И., Кожемякин В.А. Модификация метода определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой. // Лабораторное дело. -1988.-N.l l.-c.41-43. 2. Клебанов Г.И" Бабенкова И.В., Теселкин Ю.О" Комаров О.С., Владимиров Ю.А. Оценка антиокси­дантной активности плазмы крови с применением желточных липопро­теидов. // Лаб. Дело. 1988, N5 с. 59 -62. 3. Королюк М.А., Иванова Л.И., Майорова И. Г., Токарев В.Е. Метод определения активности каталазы.// Лаб. Дело. - 1988., Nl. - С. 16-19. 4. Beauchamp С., Fridovich J. Superoxide dismutase: improved assays and assay арр\iсаЫе acrilamide gels. // Analyt Bio-chem. - Vol.44, N 1.-Р.276-287. 5. Ohyashiki Т., Mohi·i Т. Increase in the molekular rigidity of the protein conformation in the intestina] brrнsh-border membranesby lipid peroxidation. // Biochem. And Biophys. Acta: Biomem-branes. - 1988. - Vol. 939 (М.157), N2-P. 383-392. 6. Hateman D" Sunde R., Noekstra W. Effect of directory selenium onerytrocyte and liver glutatione per-oxidase in the rat. // Nitrition. - 1974. -Vol. 104, N 5. - Р. 580-587. УДК 619:616.98:579.841.2:636.4 ВЛИЯНИЕ ВОЗРАСТНОГО ФАКТОРА НА ЗАБОЛЕВАЕМОСТЬ СВИНЕЙ БОРДЕТЕЛЛЕЗНОЙ ИНФЕКЦИЕЙ Вербицкий А.А. УО «Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветери­нарной медицины» Одним из тестов, характеризующих этиологическую роль микро­организмов в возникновении того или иного заболевания, является обна­ружение специфических к ним антител в различного рода серологических реакциях. Реакция агглютинации при диагностике бордетеллеза является достаточно достоверной и специфичной. Ее применение позволяет вы­явить антитела к бордетеллам в диагностическом титре 1 :40 и выше в 80% случаев. 17 РЕПЗИТОРИЙ УО ВГАВМУченые записки ВГАВМ. - 2003. - Т. 39, ч. 2

Применение научно-обоснованных методик в ветеринарии для определения показателей перекисного окисления липидов и состояния антиоксидантной системы в организме супоросных свиноматок

https://repo.vsavm.by/bitstream/123456789/9224/1/z-2003-39-2-15-17.pdf

Abstract

Similar works

Full text

Available Versions

Repository of Vitebsk State Academy of Veterinary Medicine