ARAÚJO, S. de S.

CARVALHO, J. M. F. C.

MEDEIROS, M. J. L. e

MILANI, M.

SILVA, M. M. de A.

Portuguese

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1Regeneração In Vitro do Banco Ativo de Germoplasma da Mamona (Ricinus communis L.)ComunicadoTécnico283ISSN 0102-0099Setembro/2006Campina Grande, PBRegeneração In Vitro do Banco Ativo deGermoplasma da Mamona(Ricinus communis L.)Julita Maria Frota Chagas Carvalho1Silvany de Sousa Araújo2Marina Medeiros de Araújo Silva2Maria Jaislanny Lacerda e Medeiros2Maira Milani31Dra Enga Agro  da Embrapa Algodão, Rua Osvaldo Cruz, 1143 - Centenário - CEP 58107-720, Campina Grande, PB. E-mail: julita@cnpa.embrapa.br.2Universidade Estadual da Paraíba; Estagiárias da Embrapa Algodão. e-mail: ny_araújo@hotmail.com; marinamedeirosas@yahoo.com.br;jaislanny@yahoo.com.br;3Enga Agr° da Embrapa Algodão. e-mail: maira@cnpa.embrapa.br.A mamoneira , planta de alto valor econômico tem,as sementes  como produto final processado o óleo ea torta, o primeiro é utilizado na medicina, nafabricação de filtros hospitalares de hemodiálise,prótese óssea de resina, silicones especiais, além deoutras aplicações, como matéria-prima paraprodução de tintas especiais, sabão, vernizes, nylon,cosméticos; enfim, aproximadamente 650 produtos,com a vantagem de serem biodegradáveis e debiomassa renovável; a torta é largamenteempregada como fertilizante, podendo ser utilizadapara ração de bovinos, desde que passe por umprocesso de desintoxicação (GONÇALVES et al.,2005).Devido à extraordinária capacidade de adaptação emultiplicidade de aplicações industriais do seu óleo eao valor da torta, como fertilizantes e suplementoprotéico, a mamona se situa entre as oleaginosastropicais mais significativas (FORNAZIERI JUNIOR,1986).A propagação clonal in vitro é uma técnica parapropagar plantas dentro de tubos de ensaio ousimilares de vidro, sob condições de assepsia,nutrição, luz, temperatura, oxigênio e dióxido decarbono (CARVALHO, 1999). A técnica deregeneração de plantas por meio do cultivo in vitro épossível de ser aplicada com sucesso a váriasespécies de importância econômica (EVANS et al.,1984).O germoplasma é representado pelos estoques dematerial genético potencial de uma espécie; pormeio das coleções de germoplasma ou bancos degermoplasma, genótipos de diferentes fontes oulocais geográficos são usados como fonte de genesno melhoramento de plantas. A conservação dadiversidade vegetal em bancos de germoplasma éum esforço pró-ativo que visa atender às demandaseventuais dos agricultores e assegurar asustentabilidade econômica e ecológica da cultura(NÓBREGA et al., 2001).O banco de germoplasma se destina à preservaçãoda máxima variabilidade genética vegetal, desde ascultivares até as espécies silvestres. Segundo Towill(2000), a diversidade contida em um germoplasma2 Regeneração In Vitro do Banco Ativo de Germoplasma da Mamona (Ricinus communis L.)deve ser protegida de eventuais perdas, paragarantir a sua utilização.Os bancos ativos de germoplasma (BAGs) seconstituem em um dos principais patrimônios de umaempresa ou instituição agropecuária, por serem afonte de genes que alimenta os programas demelhoramento das diferentes culturas vegetais(FIGUEIREDO NETO, 2000).Objetivou-se no trabalho, obter a regeneração invitro de acessos do banco ativo de germoplasma(BAG) da mamona (Ricinus communis L.), além daadaptação dos acessos em processo de aclimatação.Material e MétodosO experimento foi realizado no Laboratório deBiotecnologia (Cultura de tecidos), do CentroNacional de Pesquisa de Algodão (EmbrapaAlgodão), em Campina Grande, PB.Sementes de 162 acessos provenientes do CentroNacional de Recursos Genéticos (Cenargen) e dobanco ativo de germoplasma da mamona daEmbrapa Algodão, foram desinfestadas emhipoclorito de sódio a 2,5% de cloro ativo, durante20 minutos, e lavadas em água bidestilada estéril,permanecendo imersas 24 horas; posteriormente,foram retiraram-se os eixos embrionários dassementes e cultivando-os em meio MS (MURASHIGEe SKOOG, 1962) sem reguladores de crescimento eacrescido com 30g.L-1 de sacarose, 5,5g.L-1 de ágare pH ajustado para 5,7 antes da autoclavagem, a120°C , durante 20 minutos.Mantiveram-se os eixos embrionários inoculados emtubos de ensaio contendo meio básico MS, mantidosem câmara escura, durante 72 horas, observando-seo desenvolvimento dos eixos radicular e apical; emseguida, foram transferidos para câmara decrescimento regulada para 25 ±  2°C comfotoperíodo de 16h luz/ 8h escuro e intensidadeluminosa de 50 µ  mol m-2 s-1, pelo tempo de 40 dias.As plântulas permaneceram in vitro, 30 dias emdesenvolvimento; após este período,  foramtransplantadas para substrato de aclimatação,constituído de turfa e vermiculita, na proporção de 2:1, respectivamente, durante 10 dias,  tempo estereconhecido como de adaptação das plântulas.Após 40 dias em câmara de crescimento as plantasforam transferidas para o solo, e mantidas em casade vegetação, adaptando-se normalmente aoambiente ex vitro.Resultados e DiscussãoUtilizaram-se 162 acessos do BAG da mamona,totalizando 571 sementes, em que apenas 54,3%regeneraram, 45,3% não regeneraram e 5,4%foram contaminadas por fungos e/ou bactérias(Figura 1). A quantidade de sementes nãoregeneradas foi superior à de regeneradas,demonstrando que a maioria das sementes perdeu acapacidade de regeneração, cuja perda ter sidoocasionada pelo armazenamento. Mansur (2001)afirma que a viabilidade das sementes estocadasdepende de vários fatores, como percentual deumidade, teor de óleo, genótipo, condições deestocagem e contaminação. Perdas de germoplasmapodem existir mesmo sob condições ótimas, devidoao grande número de alterações prejudiciais queocorrem durante a estocagem e resultam emanormalidades citológicas e metabólicas da sement;.percebe-se, também, que a baixa percentagem decontaminação (5,4%) é reflexo da eficiência dametodologia aplicada na desinfestação dassementes. Leifert et al. (1991), afirmam que acondição fitossanitária da planta determina aeficiência do processo de desinfestação.Assim como neste trabalho, Rocha et al. (2003),Fig. 1.Percentagem de sementes regeneradas, não-regeneradas e contaminadas do BAG da mamona.também desinfestaram sementes de mamona comhipoclorito de sódio a 2,5% de cloro ativo, durante20 minutos, utilizando diferentes lavagens dassementes em água bidestilada estéril, obtendoresultados semelhantes aos da presente pesquisa.ContaminadasRegeneradas Não-RegeneradasPercentagem de sementes (%) 100,00%80,00%60,00%40,00%20,00%0,00%3Regeneração In Vitro do Banco Ativo de Germoplasma da Mamona (Ricinus communis L.)Observou-se que dos 162 acessos do BAG, 88tiveram plântulas regeneradas (Figura 2); diferentesquantidades foram encontradas nos acessos, em que25 regeneraram todas as sementes e nos demaisocorreu redução na regeneração. Não se obteveramplantas regeneradas em 74 acessos.Das plântulas regeneradas, 30 foram aclimatadas(Figura 3) e  delas, 26 foram transplantadas para osolo (Figura 4) e mantidas em casa de vegetação;algumas estão em processo de aclimataçãoenquanto outras necrosaram por não se adaptaremao ambiente ex vitro.As técnicas de cultivo in vitro constituem um modode se manter sempre disponível explantes sadios elivres de contaminação, além de serem altamenteconvenientes para manutenção de coleções deplantas de genótipos diferentes e livres de patógenos(CABRAL et al., 2003).Fig. 4. Planta transplantada para o solo em casa devegetaçãoFoto: Silvany de Sousa AraújoConclusõesOs 88 acessos do banco ativo de germoplasma damamona que estavam com os embriões viáveis,foram regenerados por meio do cultivo in vitro.Das 165 plântulas regeneradas apenas 26conseguiram adaptar-se às condições ex vitro.Referências BibliográficasCABRAL, G.B.; PIRES, M.V.V.; LACERDA, A.L.;CARNEIRO, V.T. de C. Introdução in vitro,micropropagação e conservação de plantas deBrachiaria sp. Brasília: Embrapa Recursos Genéticose Biotecnologia., 2003. 4p. (Embrapa RecursosGenéticos e Biotecnologia. Comunicado Técnico,101).CARVALHO, J.M.F.C. Técnicas demicropropagação. Campina Grande: EmbrapaAlgodão, 1999. 39p. (Campina Grande: EmbrapaAlgodão. Documentos, 64).EVANS, D.A.; SHARP, W.R.; BRAVO, J.E. Cellculture methods crop improvement. In: SHARP,D.A.; EVANS, P.V.; AMMIRATO; YAMADA, Y;(Ed). Handbook of plant cell culture: crop species.New York: Macmillan, 1984. p.47-68.FIGUEIREDO NETO, A. Caracterização morfológicae estudo da divergência genética em acessos demamona (Ricinus communis L.). 2000. 44f. Trabalhode Conclusão de Curso (Graduação) - UniversidadeFederal da Paraíba, Areia, PB.    Fig. 3. Plântula em substrato de aclimataçãoFoto: Silvany de Sousa AraújoFig. 2. Regeneração in vitro de plântula de mamonaFoto: Silvany de Sousa Araújo4 Regeneração In Vitro do Banco Ativo de Germoplasma da Mamona (Ricinus communis L.)ComunicadoTécnico, 283Exemplares desta edição podem ser adquiridos na:Embrapa AlgodãoRua Osvaldo Cruz, 1143 Centenário, CP 17458107-720 Campina Grande, PBFone: (83) 3315 4300 Fax:  (83) 3315 4367e-mail: sac@cnpa.embrapa.br1a EdiçãoTiragem: 500Comitê dePublicaçõesPresidente: Napoleão Esberard de Macêdo BeltrãoSecretária Executiva: Nivia M.S. GomesMembros: Cristina Schetino BastosFábio Akiyoshi SuinagaFrancisco das Chagas Vidal NetoJosé Américo Bordini do AmaralJosé Wellington dos SantosLuiz Paulo de CarvalhoNair Helena Castro ArrielNelson Dias SuassunaExpedientes: Supervisor Editorial: Nivia M.S. GomesRevisão de Texto: Nisia Luciano LeãoTratamento das ilustrações: Oriel Santana BarbosaEditoração Eletrônica: Oriel Santana BarbosaFORNAZIERI JUNIOR, A. Mamona: uma rica fontede óleo e de divisas. São Paulo: Ícone, 1986. 71p.GONÇALVES, N. 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Brasília: EmbrapaInformação Tecnológica, 2001. p.257-281.ROCHA, M.S.; OLIVEIRA, K.C. de; COSTA, M. daN. da; CUNHA, A.O.; CARVALHO, J.M.F.C.;SANTOS, J.W. dos. Métodos de regeneração invitro da mamoneira a partir de diferentes tipos deexplantes. Revista Brasileira de Oleaginosas eFibrosas, Campina Grande, v.7, n.1, p.647-652,2003.TOWILL, L.E. Germoplasm preservation. In:TRIGIANO, R.N.; GREY, D.J. ed. Plant tissue cultureconcepts and laboratory exercises. Boca Raton: CRCPress, 2000. p.337-353.

Regeneração in vitro do banco ativo de germoplasma da mamona.

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Regeneração in vitro do banco ativo de germoplasma da mamona.

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