Beschikbaarheid van vis voor visdieven rond Marker Wadden in juli 2020

In het kader van het Kennis- en Innovatieprogramma Marker Wadden (KIMA) is in juli 2020 onderzoek gedaan naar de foerageergebieden en prooikeuze van visdieven die broeden op Marker Wadden. In aanvulling op lopend onderzoek naar de voedselkeuze van visdieven in relatie tot het broedsucces was de belangrijkste onderzoeksvraag in dit project waar de belangrijkste foerageergebieden liggen en welke omstandigheden bepalen wanneer vis die geschikt is als prooi voor visdieven bereikbaar is voor visdieven. Hiertoe zijn drie tellingen vanuit een vliegtuig uitgevoerd waarbij de aantallen foeragerende visdieven werden genoteerd en waar mogelijk omstandigheden die van invloed zijn bij de keuze van de foerageergebieden, bijvoorbeeld de aanwezigheid van foeragerende aalscholvers en activiteiten van (vissers)schepen. Daarnaast zijn er in 3 perioden van 2-3 dagen vanaf een visserschip bemonsteringen uitgevoerd van potentiele prooivis voor visdieven. Hierbij werden met een fijnmazige broedkor bemonsteringen aan het wateroppervlak, halverwege de waterkolom en bij de bodem uitgevoerd in het zuidwestelijk IJsselmeer en oostelijk Markermeer. Ook werden aantallen foeragerende sterns geteld en waar mogelijk de prooikeuze vastgesteld aan de hand van foto’s die op locatie werden gemaakt. Visdieven bleken verspreid over het relatief troebele Markermeer (Secchi 0.3-1.0 m) te foerageren en volgden soms vrachtschepen. In het aanzienlijk helderder zuidwestelijke deel van het IJsselmeer (Secchi 1.0-3.0 m) bleken visdieven geconcentreerd in vaak grotere groepen tot maximaal 150 individuen te foerageren, niet zelden samen met foeragerende aalscholvers en futen. Ook werden foeragerende visdieven (ca 25% tijdens de tellingen) aangetroffen bij vissersschepen die aalfuiken leegden langs de Houtribdijk. In het open water van IJsselmeer en Markermeer werd hoofdzakelijk spiering aangetroffen als geschikte prooi en werden, met name op het IJsselmeer, veel visdieven met spiering waargenomen die richting de broedkolonies vlogen op Marker Wadden en Trintelzand. Daarnaast bleek driedoornige stekelbaars veelvuldig voor te komen in de bovenste waterlagen in het IJsselmeer en werd waargenomen dat visdieven die ook aten maar niet naar de broedkolonies brachten. Nabij vissersschepen en aalfuiken langs de dijk werd een aanzienlijk gevarieerder dieet waargenomen waaronder ook bodemsoorten als pos en zwartbekgrondel die naar alle waarschijnlijkheid afkomstig was uit bijvangst van aalfuiken. Waarnemingen in de foerageergebieden blijken daarmee belangrijke aanvullingen te leveren op waarnemingen aan het dieet in de broedkolonies en inzicht in de (grote) betekenis van interacties tussen visdieven, andere visetende watervogels als aalscholvers en futen, en menselijke activiteiten als scheepvaart en visserij

FcRγ-Chain ITAM Signaling Is Critically Required for Cross-Presentation of Soluble Antibody-Antigen Complexes by Dendritic Cells

The uptake of Ag-Ab immune complexes (IC) after the ligation of activating FcγR on dendritic cells (DC) leads to 100 times more efficient Ag presentation than the uptake of free Ags. FcγRs were reported to facilitate IC uptake and simultaneously induce cellular activation that drives DC maturation and mediates efficient T cell activation. Activating FcγRs elicit intracellular signaling via the ITAM domain of the associated FcRγ-chain. Studies with FcRγ-chain knockout (FcRγ(-/-)) mice reported FcRγ-chain ITAM signaling to be responsible for enhancing both IC uptake and DC maturation. However, FcRγ-chain is also required for surface expression of activating FcγRs, hampering the dissection of ITAM-dependent and independent FcγR functions in FcRγ(-/-) DCs. In this work, we studied the role of FcRγ-chain ITAM signaling using DCs from NOTAM mice that express normal surface levels of activating FcγR, but lack functional ITAM signaling. IC uptake by bone marrow-derived NOTAM DCs was reduced compared with wild-type DCs, but was not completely absent as in FcRγ(-/-) DCs. In NOTAM DCs, despite the uptake of ICs, both MHC class I and MHC class II Ag presentation was completely abrogated similar to FcRγ(-/-) DCs. Secretion of cytokines, upregulation of costimulatory molecules, and Ag degradation were abrogated in NOTAM DCs in response to FcγR ligation. Cross-presentation using splenic NOTAM DCs and prolonged incubation with OVA-IC was also abrogated. Interestingly, in this setup, proliferation of CD4(+) OT-II cells was induced by NOTAM DCs. We conclude that FcRγ-chain ITAM signaling facilitates IC uptake and is essentially required for cross-presentation, but not for MHC class II Ag presentation

FcRγ-Chain ITAM Signaling Is Critically Required for Cross-Presentation of Soluble Antibody-Antigen Complexes by Dendritic Cells

The uptake of Ag-Ab immune complexes (IC) after the ligation of activating FcγR on dendritic cells (DC) leads to 100 times more efficient Ag presentation than the uptake of free Ags. FcγRs were reported to facilitate IC uptake and simultaneously induce cellular activation that drives DC maturation and mediates efficient T cell activation. Activating FcγRs elicit intracellular signaling via the ITAM domain of the associated FcRγ-chain. Studies with FcRγ-chain knockout (FcRγ(-/-)) mice reported FcRγ-chain ITAM signaling to be responsible for enhancing both IC uptake and DC maturation. However, FcRγ-chain is also required for surface expression of activating FcγRs, hampering the dissection of ITAM-dependent and independent FcγR functions in FcRγ(-/-) DCs. In this work, we studied the role of FcRγ-chain ITAM signaling using DCs from NOTAM mice that express normal surface levels of activating FcγR, but lack functional ITAM signaling. IC uptake by bone marrow-derived NOTAM DCs was reduced compared with wild-type DCs, but was not completely absent as in FcRγ(-/-) DCs. In NOTAM DCs, despite the uptake of ICs, both MHC class I and MHC class II Ag presentation was completely abrogated similar to FcRγ(-/-) DCs. Secretion of cytokines, upregulation of costimulatory molecules, and Ag degradation were abrogated in NOTAM DCs in response to FcγR ligation. Cross-presentation using splenic NOTAM DCs and prolonged incubation with OVA-IC was also abrogated. Interestingly, in this setup, proliferation of CD4(+) OT-II cells was induced by NOTAM DCs. We conclude that FcRγ-chain ITAM signaling facilitates IC uptake and is essentially required for cross-presentation, but not for MHC class II Ag presentation