3 research outputs found
์คํ์์ค ํ์์ ์ ์ค์คํธ๋ ์ค์ ๊ทน๋ณต๋ ฅ๊ณผ์ ๊ด๊ณ
ํ์๋
ผ๋ฌธ (์์ฌ)-- ์์ธ๋ํ๊ต ๋ํ์ : ๊ฐํธํ๊ณผ, 2014. 2. ๊น๊ธ์.์คํ์์ค์ ์
์คํ๋ ํ์๋ ๋ง์ ๊ธฐ๊ณ์ฅ์น, ๋ง์ ์๋ฃ์ง์ ์ง์ค๊ฐ์ ๋ฐ ๊ฐ์กฑ๊ณผ์ ๋ถ๋ฆฌ๋ก ์ธํด ์คํธ๋ ์ค๋ฅผ ๋ฐ๊ฒ ๋๋ค. ํ์ง๋ง, ์ผ์ ๊ธฐ๊ฐ์ด ์ง๋ ์คํ์์ค ํ๊ฒฝ์ ์ต์ํด์ก๋ค๊ฐ ์ํํธ์ ์ผ๋ก ์ธํด ์ผ๋ฐ๋ณ์ค๋ก ์ ์คํ ๋์๋ ์ผ์ข
์ ๋ถ๋ฆฌ๋ถ์ ํํ์ธ ์ ์ค์คํธ๋ ์ค๋ฅผ ๊ฒฝํํ๊ฒ ๋๋ค.
์ ์ค์คํธ๋ ์ค์ ๋ํ ๋ฐ์๊ฒฐ๊ณผ๋ ํ์์ ๊ทน๋ณต๋ ฅ์ ๋ฐ๋ผ ๋ค๋ฅด๋ฉฐ, ์ด์ ๋ฐ๋ฅธ ์น๋ฃ ๊ฒฐ๊ณผ ๋ํ ๋ค์ํ๊ฒ ๋ํ๋๋ค. ์ด์ ๋ณธ ์ฐ๊ตฌ์์๋ ์คํ์ ์ค์์ ์ผ๋ฐ๋ณ์ค๋ก ์ ์คํ ํ์๋ฅผ ๋์์ผ๋ก ์ ์ค์คํธ๋ ์ค ์ ๋์ ๊ทน๋ณต๋ ฅ ์ ๋ ๋ฐ ์๊ด๊ด๊ณ๋ฅผ ํ์
ํ๊ณ ์ ํ์๋ค.
์๋ฃ์์ง์ 2013๋
4์๋ถํฐ 8์๊น์ง S๋ํ๊ต๋ณ์ ์คํ์์ค์์ ์ต์ 2์ผ ์ด์ ์ฌ์ํ์์ผ๋ฉฐ ์ผ๋ฐ๋ณ์ค๋ก ์ ์คํ์ง 24 ~ 48์๊ฐ ์ด๋ด์ ํ์ 188๋ช
์ ๋์์ผ๋ก ์ค๋ฌธ ์กฐ์ฌํ์๋ค.
์ฐ๊ตฌ๋๊ตฌ๋ ์์ฐ์ (2008)์ ์ ์ค์คํธ๋ ์ค ์ธก์ ๋๊ตฌ์ Wagnild์ Young(1993)์ด ๊ฐ๋ฐํ ๊ทน๋ณต๋ ฅ ์ธก์ ๋๊ตฌ๋ฅผ ์ก์์(2004)์ด ์์ ๋ณด์ ํ ๋๊ตฌ๋ฅผ ์ฌ์ฉํ์๋ค. ์์ง๋ ์๋ฃ๋ ์ฐ๊ตฌ์ ๋ชฉ์ ์ ๋ฐ๋ผ ๊ธฐ์ ํต๊ณ, t-test, one way ANOVA, ์ ์ค์คํธ๋ ์ค์ ๊ทน๋ณต๋ ฅ์ ์๊ด๊ด๊ณ๋ Pearson Correlation Coefficient๋ก ๋ถ์ํ์๋ค.
๋ณธ ์ฐ๊ตฌ์ ์ฃผ์ ๊ฒฐ๊ณผ๋ ๋ค์๊ณผ ๊ฐ๋ค.
1. ๋์์์ ์ ์ค์คํธ๋ ์ค ์ ๋๋ ์ด 115์ ๋ง์ ์ ํ๊ท 69.59ยฑ6.6์ , 100์ ํ์ฐ์ ์ 60.5์ ์ผ๋ก ๋ํ๋ฌ๋ค.
2. ๋์์์ ๊ทน๋ณต๋ ฅ ์ ๋๋ ์ด 175์ ๋ง์ ์ ํ๊ท 86.47ยฑ10.0์ , 100์ ํ์ฐ ์ ์ 69.2์ ์ผ๋ก ๋ํ๋ฌ๋ค.
3. ๋์์์ ์ ์ค์คํธ๋ ์ค์ ์ ์ํ ์ฐจ์ด๋ฅผ ๋ณด์ธ ์ ์ค๊ด๋ จ ํน์ฑ์ ์ ์ค ์๊ณ ์ ๋ฌด(t=-2.41, p=0.01)๋ก ๋ํ๋ฌ๋ค.
4. ๋์์์ ๊ทน๋ณต๋ ฅ์ ์ ์ํ ์ฐจ์ด๋ฅผ ๋ณด์ธ ์ ์ค๊ด๋ จ ํน์ฑ์ ๊ฐ์กฑ์๊ฒ ์ ์ค ๊ด๋ จ ์ ๋ณด ์ ๊ณต ์ ๋ฌด(t=1.97, p=0.05)๋ก ๋ํ๋ฌ๋ค.
5. ์คํ์์ค ํ์์ ์ ์ค์คํธ๋ ์ค์ ๊ทน๋ณต๋ ฅ์ ํต๊ณ์ ์ผ๋ก ์ ์ํ ๋ถ์ ์๊ด๊ด๊ณ ๊ฐ ์๋ ๊ฒ์ผ๋ก ๋ํ๋ฌ๋ค(r=-.209, p=.004).
์ด์์ ์ฐ๊ตฌ ๊ฒฐ๊ณผ, ๊ทน๋ณต๋ ฅ๊ณผ ์ ์ค์คํธ๋ ์ค์ ์๊ด๊ด๊ณ๋ก ๋ณผ ๋ ์คํ์์ค ํ์์ ๊ทน๋ณต๋ ฅ์ด ๋์ผ๋ฉด ์ ์ค์คํธ๋ ์ค๊ฐ ๋ฎ์ ๊ฒ์ ์ ์ ์์๋ค. ๋ํ, ํ์์ ์ ์ค์คํธ๋ ์ค ๊ฐ์๋ฅผ ์ํด์๋ ์คํ์์ค ์
์ค ๋๋ถํฐ ์ ์ค์ ๋ํด ๋ฏธ๋ฆฌ ์ ๋ณด๋ฅผ ์ ๊ณตํ๊ณ , ๊ทน๋ณต๋ ฅ ์ฆ์ง์ ์ํด์๋ ๊ฐ์กฑ์๊ฒ ์ ์คํ ๋ณ๋ ํ๊ฒฝ์ ๋ํ ์ค๋ช
์ด ํ์ํ๋ค๋ ๊ฒ์ ์ ์ ์์๋ค. ์ด๋ฅผ ๋ฐํ์ผ๋ก ์ ์ค ํ๋กํ ์ฝ ๊ฐ๋ฐ๊ณผ ํ์์ ๊ฐ์กฑ์ด ์ง์ง์์์ผ๋ก์จ ์ญํ ์ ํ ์ ์๋๋ก ๊ฐ์กฑ ๊ต์ก์๋ฃ ๊ฐ๋ฐ์ด ํ์ํ๊ฒ ๋ค.๊ตญ ๋ฌธ ์ด ๋ก โ
ฐ
I. ์ ๋ก 1
1. ์ฐ๊ตฌ์ ํ์์ฑ 1
2. ์ฐ๊ตฌ ๋ชฉ์ 3
3. ์ฉ์ด ์ ์ 4
II. ๋ฌธํ ๊ณ ์ฐฐ 5
1. ์ ์ค์คํธ๋ ์ค 5
2. ๊ทน๋ณต๋ ฅ 10
3. ์คํธ๋ ์ค์ ๊ทน๋ณต๋ ฅ๊ณผ์ ๊ด๊ณ 14
III. ์ฐ๊ตฌ ๋ฐฉ๋ฒ 16
1. ์ฐ๊ตฌ์ค๊ณ 16
2. ์ฐ๊ตฌ๋์ 16
3. ์ฐ๊ตฌ๋๊ตฌ 17
4. ์๋ฃ์์ง ๋ฐฉ๋ฒ 19
5. ์ค๋ฆฌ์ ๊ณ ๋ ค 20
6. ์๋ฃ๋ถ์ ๋ฐฉ๋ฒ 20
โ
ฃ. ์ฐ๊ตฌ๊ฒฐ๊ณผ 22
โ
ค. ๋
ผ์ 40
โ
ฅ. ๊ฒฐ๋ก ๋ฐ ์ ์ธ 47
์ฐธ๊ณ ๋ฌธํ 50
๋ถ ๋ก 64
Abstract 74Maste
PacBio SMRT ์ผ๊ธฐ์์ด๋ถ์ ๊ธฐ์ ๊ธฐ๋ฐ Monascus ruber ๋์ CRISPR/Cas9 ์์คํ ๊ฐ๋ฐ
ํ์๋
ผ๋ฌธ(์์ฌ) -- ์์ธ๋ํ๊ต๋ํ์ : ๊ตญ์ ๋์
๊ธฐ์ ๋ํ์ ๊ตญ์ ๋์
๊ธฐ์ ํ๊ณผ, 2021.8. ์นผ๋ฃจ.The genus Monascus has been used in the production of food components, natural pigments, and food supplements with positive effects on human health. As a result of beneficial effects, secondary metabolites produced by Monascus spp. have received worldwide attention and used industrially in recent years. It has been proved that Monascus spp. can synthesize various secondary metabolites: Monascus pigments, monacolin K, and citrinin. Monascus pigments have been used as natural food colorants and possess a wide range of biological functions. In addition, monacolin K lowers cholesterol by inhibiting HMG-CoA reductase. Even though Monascus spp. produce beneficial secondary metabolites, some strains can secrete citrinin, which has been found to be nephrotoxic, hepatoxic, and carcinogenic. Thus, the Monascus fermented food products have been concerned and controversial.
With the advance of fungal metabolic engineering, the formation of secondary metabolites in filamentous fungi could be regulated by genetic engineering. The aim of this study was to establish CRISPR/Cas9 system in Monascus spp. based on PacBio SMRT sequencing. In Chapter 2, the whole genome sequence of Monascus ruber was generated. The total length of 25.9 Mb was obtained using PacBio RSII sequencer with de novo assembly. As a result of genome assemblies with long reads from PacBio SMRT sequencing, the whole genome sequence of M. ruber consisted of 13 contigs with 9,639 predicted genes. Furthermore, citrinin biosynthetic gene clusters were mostly lost, while beneficial secondary metabolites, monacolin K and Monascus pigments, biosynthetic gene clusters were present in M. ruber, indicating this strain serves as a promising industrial strain without citrinin production. To validate M. ruber could be characterized as a citrinin-free strain, HPLC analysis was performed and citrinin was not detected in M. ruber. With the genetic analysis of the function of biosynthetic related gene clusters, comprehensive insight into secondary metabolites of Monascus spp. was discussed in Chapter 2.
In Chapter 3, CRISPR/Cas9 system was established in M. ruber to precisely engineer MpigI and MpigIโ, putative negative transcriptional regulators. In vitro transcribed sgRNAs were adopted for transformation in the Cas9 expressed transfomrants to target MpigI and MpigIโ. Based on Sanger sequencing results, six putative mutants were obtained. The mutants generated from the Cas9-mediated cleavage with dual sgRNAs were able to produce increased Monascus pigment production compared to the wild-type strain since induced-downregulation of MpigI and MpigIโ leads the increase in Monascus pigment production. Further analysis of mutants validated that CRISPR/Cas9 system was successfully established in M. ruber. This study was the first report of CRISPR/Cas9 system in M. ruber.ํ๊ตญ๊ท ์ ์ธ๊ฐ์ ๊ฑด๊ฐ์ ๊ธ์ ์ ์ธ ์ํฅ์ ์ฃผ๋ ์ํ ๋ณด์กฐ์ ๋ก ์ค๋ ๊ธฐ๊ฐ ๋์ ์ฌ์ฉ๋๊ณ ์๋ค. ํ๊ตญ๊ท ์ด ์์ฐํ๋ ๋ํ์ ์ธ 2์ฐจ ๋์ฌ์ฐ๋ฌผ์ ๋ชจ๋์ฝ๋ฆฐ ์ผ์ด, ํ๊ตญ์์, ์ํธ๋ฆฌ๋์ด ์๋ค. ๋ชจ๋์ฝ๋ฆฐ ์ผ์ด๋ ์คํํด์ผ๋ก์จ HMG-CoA ํ์ํจ์๋ก ๊ฐ์์ ํฉ์ฑ๋๋ ์ฝ๋ ์คํ
๋กค ํฉ์ฑ์ ์ต์ ํ์ฌ ๊ณ ์งํ์ฆ ์น๋ฃ์ ๋ก ์ฌ์ฉ๋๋ค. ํ๊ตญ์์๋ ๋จ๋ฐฑ์ง๊ณผ์ ์ฐฉ์๋ ฅ์ด ์ข์ ์ํ์ ์ฒ์ฐ์์๋ก์ ๋ค์ํ ์ฐ์
์์ ๋๋ฆฌ ์ด์ฉ๋๊ณ ์๋ค. ๋ํ, ํ๊ตญ์์๋ ์ฒ์ฐ์์ ๊ธฐ๋ฅ๋ฟ๋ง ์๋๋ผ ํญ์ผ ๋ฐ ํญ์ฐํ ํจ๊ณผ๊ฐ ์๋ค๊ณ ์๋ ค์ ธ ์๊ณ ๊ฑด๊ฐ๊ธฐ๋ฅ์ํ์ผ๋ก๋ ์ฃผ๋ชฉ๋ฐ์๋ค.
๋ณธ ๋
ผ๋ฌธ์์๋ PacBio SMRT ์ํ์ฑ ๊ธฐ์ ์ ๊ธฐ๋ฐ์ผ๋ก ํ๊ตญ ์ ํต ์ฅ๋ฅ ์ํ์์ ๋ถ๋ฆฌํ M. ruber์ ํ๊ตญ์์ ์์ฐ๋์ ๋์ด๊ธฐ ์ํด CRISPR/Cas9 ์์คํ
์ ์ ์ฉํ์๋ค. Chapter 2์์๋ PacBio RSII ์ํ์์ de novo ์ด์
๋ธ๋ฆฌ๋ฅผ ์ฌ์ฉํ์ฌ ์ด ๊ธธ์ด 25.9 Mb๋ก ์ด๋ฃจ์ด์ง M. ruber์ ์ ์ ์ฒด๋ฅผ ์ป์๋ค. PacBio SMRT ์ํ์ฑ์ ํตํด์ ์ป์ด๋ธ ์ด์
๋ธ๋ฆฌ ๊ฒฐ๊ณผ, M. ruber๋ 9,639๊ฐ์ ์ ์ ์๋ฅผ ํฌํจํ 13๊ฐ์ contig๋ก ๊ตฌ์ฑ๋์ด ์์๋ค. 2์ฐจ ๋์ฌ์ฐ๋ฌผ์ ๊ด์ฌํ๋ ์ ์ ์๋ฅผ ๋ถ์ํ ๊ฒฐ๊ณผ, ์ํธ๋ฆฌ๋ ํฉ์ฑ ์ ์ ์๋ ๋๋ถ๋ถ ์์ค๋์๊ณ , ์ ์ตํ 2์ฐจ ๋์ฌ์ฐ๋ฌผ์ธ ๋ชจ๋์ฝ๋ฆฐ ์ผ์ด์ ํ๊ตญ์์ ์ ์ ์๊ฐ ์กด์ฌํ์๋ค, ์ด๋ M. ruber๊ฐ ์ํธ๋ฆฌ๋ ์์ฐ์ด ์๋ ์ ๋งํ ์ฐ์
๊ท ์ฃผ๋ก ์ฌ์ฉ๋ ์ ์๋ค๋ ๊ฒ์ ๋ํ๋ธ๋ค. Citrinin ์์ฑ ์ ๋ฌด๋ฅผ ์ ํํ ํ์ธํ๊ธฐ ์ํด HPLC ๋ถ์์ ์ํํ์๊ณ , ์ต์ข
์ ์ผ๋ก M. ruber์์ citrinin์ด ๊ฒ์ถ๋์ง ์์๋ค.
Chapter 3์์๋ negative regulator๋ก ์ถ์ ๋๋ MpigI์ MpigI'โ์CRISPR/Cas9 ์์คํ
์ ์ ์ฉํ์๋ค. ํจ๊ณผ์ ์ธ ์ ์ ์ ๊ต์ ์ผ๋ก mutation์ ์ ๋ํ๊ธฐ ์ํด ๋ ๊ฐ์ sgRNA๋ฅผ ํ๊ฒ ์ ์ ์์ ์๋ณด์ ์ธ ์ผ๊ธฐ์์ด๋ก ์ค๊ณํ๋ค. ํ๋ผ์ค๋ฏธ๋ ๋ฒกํฐ๋ก ์ด๋ฐ๋ Cas9๊ณผ in vitro๋ก ํฉ์ฑ๋ sgRNAs๋ ํ์ง์ ํ์ ํตํด ํ๊ฒ ์ ์ ์๋ฅผ ๊ต์ ํ๋ค. Sanger ์ํ์ฑ ๊ฒฐ๊ณผ๋ฅผ ๋ฐํ์ผ๋ก ์ต์ข
์ ์ผ๋ก 6๊ฐ์ mutants๊ฐ ์์ฑ๋์๋ค. Mutation์ด ์ ๋๋ M. rube๊ฐ wild-type์ ๋นํด ํ๊ตญ์์ ์์ฐ์ฑ์ด ๋์์ง ๊ฒ์ ํ์ธํ์๋ค. Mutants์ ๋ํ ์ถ๊ฐ ๋ถ์์ ํตํด CRISPR/Cas9 ์์คํ
์ด M. ruber์์ ์ฑ๊ณต์ ์ผ๋ก ๊ตฌ์ถ๋์์์ ๊ฒ์ฆํ๋ค. ๋ณธ ์ฐ๊ตฌ๋ M. ruber์ CRISPR/Cas9 ์์คํ
์ ๋ํ ์ฒซ ๋ฒ์งธ ์ฐ๊ตฌ์ด๋ค.Chapter1 Research background 1
1. Fungi 1
1.1. Filamentous fungi 1
1.2. Monascus spp. 2
1.3. Red yeast rice 2
2. Secondary metabolites 3
2.1. Secondary metabolites in Monascus spp. 3
2.1.1. Monascus pigments 5
2.1.2. Monacolin K 7
2.1.3. Citrinin 9
3. Genome editing 9
3.1. Definition and DNA repair pathway 9
3.1.1. Non-homologous end joining (NHEJ) pathway 10
3.1.2. Homology directed repair (HDR) pathway 10
3.2. CRISPR/Cas9 system 10
3.3. CRISPR/Cas9 system in different species of filamentous fungi 13
4. Overall objectives 15
Chapter 2 Whole genome sequence of Monascus ruber isolated from Korean traditional fermented food 16
1. Introduction 16
2. Materials and methods 18
2.1. Strain and culture conditions 18
2.2. DNA extraction 18
2.3. Genomic sequencing and assembly 19
2.4. Citrinin analysis 19
3. Results and discussion 21
3.1. Genome sequence and assembly 21
3.2. Comparison with other publicly available Monascus genomes 24
3.3. Identification of secondary metabolite gene clusters 26
3.3.1. Monascus pigments biosynthesis 28
3.3.2. Monacolin K biosynthesis 31
3.3.3. Citrinin biosynthesis 33
4. Conclusions 35
Chapter 3 CRISPR/Cas9 system in filamentous fungi Monascus ruber 36
1. Introduction 36
2. Materials and methods 39
2.1. Strains, plasmid, primers, and culture conditions 39
2.2. Preparation of in vitro transcriptional sgRNA 41
2.3. Protoplast preparation and transformation 41
2.4. DNA extraction and PCR analysis of putative M. ruber transformants 42
2.5. Analysis of secondary metabolites 44
2.5.1. Monascus pigment analysis 44
2.5.2. Extraction and analysis of monacolin K 44
2.5.3. Citrinin analysis 45
2.6. RNA extraction and RT-PCR analysis 45
3. Results and discussion 46
3.1. Establishment of Cas9 expressed transformants 46
3.2. Designing dual sgRNA for disrupting MpigI and MpigI' 49
3.3. PCR screening of M. ruber MpigI and MpigI' mutants 49
3.4. Sequencing analysis of MpigI and MpigI' mutants 53
3.5. Comparison of the wild-type M. ruber strain and the mutants of MpigI and MpigI' 61
3.5.1. Fungal growth 61
3.5.2. Colony morphology 61
3.5.3. Monascus pigment production 65
3.5.4. Monacolin K analysis 68
3.5.5. Citrinin analysis with M. purpureus BCRC 31541 68
3.6. RT-PCR analysis of MpigI and MpigI' mutants 71
4. Conclusions 73
References 74
Abstract in Korean 87์