Evaluation of biofilm formation and removal efficacy of three medical-device detergents by bacterial and yeast species.

Background: Bacterial biofilms are highly resistant to antibiotics and disinfectants because of low penetrance to these agents. The biofilm is well-known risk factors of healthcare-associated infections, which facilitates antimicrobial resistance. Therefore, biofilm removal is essentially required for medical device cleaning. Both of mechanical methods such as sonication and flushing and chemical methods such as enzymatic and non-enzymatic detergents are used to remove bacterial biofilm. There are several commercially available medical cleaners against biofilm including enzymatic detergents (ex, proteinase, amylase) and non-enzymatic detergents such as Matrix which lyse carbohydrates EPS. There is lack of detergent efficacy studies against biofilm at various conditions with various pathogenic bacteria and fungi. This study is conducted to test biofilm-forming capacity of various strains, identify biofilm-facilitating conditions, and evaluate the removal efficacy of medical detergents. Methods: For evaluating biofilm-forming capacity, 35 clinical isolates, seven American Type Culture Collection (ATCC) strains, and two established S. aureus strains were included. A total of 44 strains comprised Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Citrobacter freundii, Acinetobacter baumannii, Candida albicans, Candida auris, Trichosporon asahii, Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, and Streptococcus agalactiae. Biofilms were cultured for one day on 96-well polystyrene microplates. Optic densities (OD) at 620nm were measured quantitively as total biomass for crystal violet stained biofilm. All OD measurement were triplicated and mean and standard deviation of measurand were calculated. Three wells were stained without biofilm culture as sample blank for each measurement. With nine active biofilm-forming isolates (two gram-positive cocci, four gram-negative rods, and three yeasts), biofilms were produced with incubation for three days on the microplates with previously established condition. Three detergents including two enzymatic detergents (Empowerⓡ, Cidezymeⓡ), and a non-enzymatic detergent (Matrix mintⓡ) were evaluated for biofilm removal efficacy under each condition (8 minutes once, 8 minutes twice, 8 minutes thrice, and 30 minutes once at room temperature (RT), and 30 minutes once at 37℃). and chlorine bleach and distilled water were used as a positive control and a negative control, respectively. After 30 minutes elution using 95% ethanol, optic density at 620nm was measured as residual biofilm amount. The OD value after one-time 8-minute washing with distilled water were set as baseline OD value. For evaluating removal efficacy, each value was divided with baseline OD to calculate biofilm residual percentage. Data analysis were performed with student’s t-test using mean and standard deviation value of triplicated measurements. Result: P. aeruginosa AMC100009, C. albicans ATCC14053, T. asahii AMC1802A11511, C. auris AMC1804C1704, and P. aeruginosa AMC99241 produced profuse biofilms. Addition of 4% NaCl and 8% or 10% ethanol facilitated biofilm formations significantly. While chlorine bleach was effective against all strains, detergents had various removal efficiency depending on species and washing conditions. With P. aeruginosa, E. coli ATCC35218, E. coli AMC1910E6615, C. albicans, C. auris, S. aureus biofilms, biofilm removal percentage with enzymatic detergents were higher than 50% at 37℃; 66%, 82%, 52%, 82%, 71% by Cidezyme, 13%, 69%, 80%, 92%, 71% by Empower. K. penumoniae–producing biofilms were significantly removed by various conditions (42-75%) but not by immersion for 30 minutes at 37℃ (5%). With E. faecalis, C. auris, and T. asahii biofilms, removal percentages of any detergents were no more than 30% under any conditions. Matrix mint did not significantly remove biofilms of all strain. Conclusion: Biofilm-forming capacity and removal efficacy varied along species and strains of microorganisms. Enzymatic detergents had better performance for removing biofilms generally than non-enzymatic detergent. However, E. faecalis, C. auris, and T. asahii biofilms were not removed effectively by all tested detergents. |배경: 바이오필름을 형성한 박테리아는 항생제나 소독제의 침투가 어려워서 이들에 대한 내성을 가진다. 바이오필름은 의료관련감염의 주요한 기전으로 알려져 있고, 특히 항균제로 치료하기 어렵고 항균제 내성균으로 변이를 촉진한다. 따라서 의료기구의 재사용 시 바이오필름을 제거하는 것이 중요하며, 이를 위해 음파파쇄, 혹은 세척 등의 물리적 방법과 세정제 등의 화학적 방법 등을 사용한다. 단백분해효소나 아밀라아제 등을 이용하는 효소계 세정제나 세균이 분비하는 탄수화물 복합체를 용해하는 활성을 가진 비효소계 세정제 등이 의료용 세정제로 승인되어 있다. 세정제의 바이오필름 제거능을 평가한 연구가 드물다. 이 연구는 임상적으로 중요한 세균 및 진균의 다양한 균종들에서 바이오필름 형성능이 있는 균주와 조건을 정립하고, 의료용 세정제들의 바이오필름 제거능을 평가하였다. 방법: Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Citrobacter freundii, Acinetobacter baumannii, Candida albicans, Candida auris, Trichosporon asahii, Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Streptococcus agalactiae를 포함하는 임상검체 분리주 35개와 American Type Culture Collection (ATCC) 및 외부에서 얻은 표준균주 9개를 폴리스티렌 마이크로플레이트에 배양하여 얻은 바이오필름을 크리스탈 바이올렛으로 염색하여 흡광도를 측정하였다. 각 조건에서 흡광도 측정은 항상 3회 반복하여 평균과 표준편차를 구하였다. 매 측정시 배양액을 분주하지 않은 3개 정(well)들의 값을 평균하여 공시료(Sample blank)로 설정하였다. 높은 바이오필름 형성능을 보인 9주(그람양성구균 2주, 그람음성간균 4주, 효모균 3주)를 이용해 3% Bacto tryptic soy broth에 하룻밤 배양시킨 후 1:100으로 희석하여 마이크로플레이트에 3일간 배양 후 바이오필름을 형성시켰다. 바이오필름 제거능은 염소계 표백제(유한락스ⓡ)와 증류수를 양성대조군과 음성대조군으로 설정하고 효소계 세정제 2종(Empowerⓡ, Cidezymeⓡ), 비효소계 세정제 1종(Matrix mintⓡ)을 이용해 각각 실온에서 8분씩 3회 세척, 30분간 1회 세척, 37℃에서 30분간 1회 세척하는 조건들에 대해 증류수로 실온에서 8분간 1회 세척했을 때를 기저값으로 설정하여 비교하였다. 크리스탈 바이올렛으로 5분 간 염색 후 증류수로 2회 세척하고, 95% 에탄올에 30분 간 용출시켜 620nm에서 흡광도를 측정하였다. 각 조건에서 흡광도를 기저값의 흡광도로 나누어 바이오필름 잔여 백분율을 구함으로써 바이오필름 제거능을 평가하였다. 3회 반복된 실험값의 평균과 표준편차를 이용해 스튜던트의 T 검정을 이용해 통계 분석하였다. 결과: 바이오필름의 총 생물량을 측정하였을 때, P. aeruginosa AMC1100009, C. albicans AMC99252, T. asahii AMC1802A11511, C. auris AMC1804C1704, P. aeruginosa AMC99241 순으로 형성능을 보였다. NaCl를 4% 첨가하거나, 에탄올을 8%와 10% 첨가하였을 때 S. aureus의 바이오필름 생성량이 유의하게 증가함을 확인할 수 있었다 (p= 0.02, 0.04, 0.04). 염소계 표백제는 모든 균종에서 뚜렷한 바이오필름 제거능을 보인 반면, 다른 세정제는 균종과 세척 조건에 따라 제거능이 달랐다. 효소계 세정제(Cidezyme, Empower)를 37℃에서 30분 조건에서, P. aeruginosa ATCC27853, E. coli ATCC35218, E. coli AMC1910E6615, C. albicans ATCC14053, C. auris AMC1804C1704, S. aureus RN9120에서 바이오필름의 제거율이 50% 이상이었다. Cidezyme의 제거율은 66%, 82%, 52%, 82%, 71%, Empower는 13%, 69%, 80%, 92%, 71%이었다. K. penumoniae AMC1910I244는 Empower의 제거율이 실온에서 8분간 1회, 2회, 그리고 30분간 1회 조건에서: 각각 42%, 75%, 55%로 유의한 바이오필름 제거능을 보였으나, 37℃에서 30분간 1회 조건에서는 5%로 제거능을 보이지 않았다. E. faecalis AMC98901, C. auris AMC1804C1704, T. asahii AMC1802A11511의 경우 30% 이상의 제거능을 보이는 세정제가 없었다. Matrix mint는 모든 균주에서 세척능이 유의한 조건이 없었다. 결론: 동일 균종이라 할지라도 균주에 따라 바이오필름 형성능과 제거능은 차이가 있었다. 효소계 세정제가 비효소계 세정제에 비해 바이오필름 제거 효과가 우수하였으며, 37℃ 조건, 다회 세척할 때 제거능이 향상되었다. E. faecalis, C. auris, T. asahii 와 같은 균종들은 세정제에 의한 바이오필름 제거 효과가 유의하지 않았다. 바이오필름을 제거하는 세정제 효과는 특정 균주와 조건에서만 유의한 수준으로 나타나서 세정제 단독으로 바이오필름 제거를 기대할 수는 없었다.Maste

adjust method of optical amplifier for WDM transmission systems

본 발명은 파장분할다중방식 광전송시스템을 위한 광증폭기의 조정방법에 관한 것으로서, 더 상세하게는 고정이득 평탄화필터와 가변 감쇄기 대신에 능동이득 평탄화필터를 사용하고 이를 제어하기 위하여 광감시부와 제어 회로로 부궤환 회로를 구성하여 넓은 범위에서 평탄화된 능동 이득을 얻을 수 있는 파장분할다중방식 광전송시스템을 위한 광증폭기의 조정방법에 관한 것이다.본 발명은 광증폭하는 과정과, 펌프원을 이용하여 펌핑에 의해 이득을 제공하는 과정과, 능동이득 평탄화필터를 통과하는 광신호를 검출하는 과정과, 검출된 광신호로부터 광스펙트럼을 얻는 과정과, 상기 광스펙트럼으로부터 능동이득 평탄화필터와 펌프원을 조정하는 제어 신호를 발생시키는 과정과, 상기 제어신호가 광증폭기의 출력 광스펙트럼을 항상 일정하게 만드는 과정으로 이루어진다.자동파워조정, 광스펙트럼 감시부, 펌프원, 능동이득 평탄화필터, 능동 파워 제어 회로

Dynamic gain flattening algorithms for erbium-doped fiber amplifiers

학위논문(석사) - 한국과학기술원 : 전기및전자공학전공, 2001.2, [ iii, 54 p. ]한국과학기술원 : 전기및전자공학전공

Broadband Light Source using Fabry-Perot Laser Diodes and method thereof

본 발명은 WDM-PON 기반의 광가입자망에서 사용할 수 있는 파장 잠김된 FP LD를 구현하는데 필요한 광대역 비간섭성 광원에 관한 것으로, 저가의 FP LD의 상호 주입(Mutual Injection)을 이용한 방법과 처핑(Chirping)을 겪은 FP LD를 이용한 방법으로 광대역 비간섭성 광원을 제안한다. 현재 사용되고 있는 광대역 비간섭성 광원으로 LED, SLD, EDFA 등이 있으나, 파워 레벨이 낮거나 소자 자체의 가격이 높은 등의 비효율적인 특성이 있다. 이에 반해, 본 발명에서 제안하는 FP LD를 이용한 광대역 비간섭성 광원은 구성이 매우 간단할 뿐만 아니라 저가로 구현가능하다는 장점을 가진다