In der vorliegenden Arbeit wurde die Vitalität, Integrität und Differenzierung von
adipogenen Stammzellen (ASCs) auf biofunktionalisierten Faserkonstrukten
unter Einsatz diverser biochemischer Methoden untersucht. Dabei stellen die
Faserkonstrukte ein Gerüst (eng. scaffold) dar, worauf sich die Zellen anheften
und vorzugsweise proliferieren können, um damit potenzielle lokale Schäden
eines Organismus zu beheben. Dafür wurde das Fasergerüst mit drei
verschiedenen Laminin-Peptidsequenzen funktionalisiert zur Steigerung der
Zelladhäsion via Integrine und die Zellen schließlich in vitro zur Differenzierung
angeregt. Nach qualitativer Auswertung der biofunktionalisierten Scaffolds ohne
Zellen, wie auch Scaffolds mit Zellen ohne induzierten Differenzierungsreiz,
schien die RGDS-Sequenz sowohl bezüglich der Makrostruktur der Fasern als
auch der produzierten EZM-Fläche auf dem Gerüst die besten Resultate erzielt
zu haben. Darüber hinaus wurden die höchsten Werte für den Zellmetabolismus
anhand des WST-1 Assays und die höchsten relativen DNA-Mengen für RGDS
festgestellt. Nach Zugabe der Differenzierungsinduktoren zur Untersuchung der
Adhäsion für ASCs konnte qualitativ kein Unterschied anhand der
Fluoreszenzmikroskopie zwischen den Peptidsequenzen oder
Medienzusammensetzungen erkannt und interpretiert werden. Hingegen konnte
mit Hilfe der qPCR von adipogenen Markergenen eine höhere Expressionsrate
für PPARγ und PLIN1 auf RGDS-IKVAV- und RGDS-YISGR-Konstrukten im
Vergleich zu RGDS-Konstrukten bestimmt werden. Diese Tatsache bekräftigt
das Potential von IKVAV bzw. YIGSR als mögliche Adhäsions-Ankerpunkten für
(Prä-)Adipozyten für ausgewählte Einsatzgebiete in der regenerativen Medizin.
Basierend auf den vorliegenden Daten weist bisher RGD(S) dennoch das
höchste Potential als nahezu universelle Zell-Adhäsionssequenz auf und
bekräftigt erneut die umfassende Anzahl an Publikationen und das hohe
Forschungsinteresse diese Sequenz zu integrieren, die weit über das
Elektrospinning hinausgehen.In the present study, the vitality, integrity and differentiation of adipogenic stem cells (ASCs) on biofunctionalized fibrous constructs were investigated using various biochemical methods. The fiber constructs represent a scaffold on which the cells can attach and preferably proliferate in order to repair potential local damage to an organism. For this purpose, the fibre scaffold was functionalized with three different laminin peptide sequences to increase cell adhesion via integrins and the cells were finally stimulated to differentiate in vitro. After qualitative evaluation of the biofunctionalized scaffolds without cells, as well as scaffolds with cells without induced differentiation stimulus, the RGDS sequence appeared to have achieved the best results in terms of both the macrostructure of the fibers and the area of ECM produced on the scaffold. In addition, the highest values for cell metabolism using the WST-1 assay and the highest relative DNA amounts were found for RGDS. After addition of the differentiation inducers to study adhesion for ASCs, no qualitative difference could be detected and interpreted by fluorescence microscopy between the peptide sequences or media compositions. In contrast, qPCR of adipogenic marker genes revealed a higher expression level for PPAR “γ” and PLIN1 on RGDS-IKVAV and RGDS-YISGR constructs compared to RGDS constructs. This fact confirms the potential of IKVAV or YIGSR as possible adhesion anchor points for (pre-)adipocytes for selected applications in regenerative medicine. Based on the available data, RGD(S) still shows the highest potential as a nearly universal cell adhesion sequence and reaffirms the extensive number of publications and the high research interest in integrating this sequence, which goes far beyond electrospinning
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